Sissetuleva bioloogilise materjali vastuvõtmine ja registreerimine. Bioloogilise materjali võtmise, kohaletoimetamise, vastuvõtmise, töötlemise ja registreerimise eeskirjad. Üldised kliinilised laboratoorsed uuringud – dokument. Tarnitavad torud peavad olema sisse pandud

Saada oma head tööd teadmistebaasi on lihtne. Kasutage allolevat vormi

Üliõpilased, magistrandid, noored teadlased, kes kasutavad teadmistebaasi oma õpingutes ja töös, on teile väga tänulikud.

postitatud http://www.allbest.ru/

"Nižni Novgorodi meditsiinikolledž"

(GBOU SPO NO "NMK")

Test

Teema: "Biomaterjali vastuvõtu, märgistamise ja registreerimise korraldamine"

Lõpetatud:

221-IV rühma õpilane.

Stepanychev M.N.

Õpetaja:

Belova M.N.

N. Novgorod 2016

Sissejuhatus

1. Teoreetiline osa

1.1 Juhiste registreerimine

1.2 Laborirežiimid

1.3 Kliinilise laborimaterjali ladustamis- ja transporditingimused

1.4 Reguleerimisala

1.5 Biomaterjali kulleri transportimise protsessi korraldamine ja kulleri vastutus

1.6 Biomaterjali vastuvõtmine laboris

1.7 Biomaterjali ja saatekirjade üleandmine labori vastavatesse osakondadesse

1.8 Tellimuslehtede registreerimine operaatorite poolt

2. Praktiline osa

Järeldus

Sissejuhatus

Laboratoorsed uuringud on patsiendi seisundi kõige tundlikumad näitajad. Kliinilised spetsialistid laboratoorne diagnostika On juba ammu teada, et laborianalüüside tulemusi võivad mõjutada paljud tegurid. Nende tegurite hulgas: õigesti tarnitud ja hästi vormitud biomaterjali proovid ja nendega seotud dokumentatsioon. Sellise toetava teabe puudumisel (mõjutavad tegurid laboriuuringud) võib arst saadud tulemust valesti tõlgendada ja teha patsiendi suhtes vale toimingu.

Selle kontrolli eesmärk on juhtida tähelepanu vajadusele vaadata üle bioloogilise materjali dokumentatsiooni vastuvõtmise ja töötlemise eeskirjad. Teabe õige kasutamine peaks kaasa tooma tarbetute uuringute vähenemise, kulude vähenemise ja uurimistulemuste parema mõistmise.

Sihtmärk:

Uurida biomaterjali vastuvõtmise, märgistamise ja registreerimise korraldust.

Ülesanded:

1. Biomaterjali omastamise uurimine.

2. Selle dokumentatsiooni koostamine.

1. Teoreetiline osa

Praegu on haiguste diagnoosimisel ja ravimisel võtmerolli laboratoorsed uurimismeetodid. Patsientide uurimisel suur tähtsus omama laboridiagnostika korralduslikke aspekte, laboratoorsete uuringute täpsuse ja korrektsuse tagamist, stabiilsete, tehniliselt töökindlate analüüsimeetodite kasutamist ning uuringute kvaliteedikontrolli.

Tervishoiuasutustes on kasutusel üsna lai laboratoorsete meetodite arsenal ning ühtsete rutiinsete meetodite kõrval kasutatakse ka kaasaegsed meetodid kõrge spetsiifilisuse ja teabesisuga uuringud.

Väga spetsiifiliste laboratoorsete meetodite kasutuselevõtt haiguste diagnoosimiseks tervishoiupraktikas nõuab standardimist diagnostikaprotsessi kõikides etappides.

Preanalüütiliste vigade osakaal laboratoorsete vigade koguarvust jääb vahemikku 50% kuni 95%. Laboratoorsete uuringute eelanalüütilises etapis esinevad vead devalveerivad kogu edasise laboriuuringute käigu, viivad märkimisväärsete rahaliste vahendite kaotuseni, diskrediteerivad laborimeetodeid raviarsti silmis saadud tulemuste ebausaldusväärsuse tõttu.

Igat tüüpi laboriuuringute puhul ühendab eelanalüütiline etapp protsesside komplekti enne tegelikku laborianalüüs, mis koosneb:

ainete hoolikas ettevalmistamine;

Biomaterjali (veri, uriin jne) saamine;

biomaterjali transport laborisse;

· biomaterjali esmane töötlemine laboris;

biomaterjali jaotamine ja ladustamine laboris.

Eelanalüütilise protsessi nende etappide põhiülesanne on tagada uurimistööks võetud biomaterjalide komponentide stabiilsus (säilivus) ja minimeerida erinevate nende kvaliteeti muutvate tegurite mõju.

Sellega seoses peetakse silmas eelanalüütilist etappi.

1.1 Juhiste registreerimine

Materjali võtmisel peate õigesti täitma suuna. Katseklaase ja kaasasolevaid dokumente, etikette ei tohi segi ajada. Katseklaasile on märgitud osakonna ja seerianumber. Katseklaasil verega rühma ja Rh-kuuluvuse määramiseks - lisaks patsiendi perekonnanimi.

Biomaterjali võtmisel analüüsimise suunal tuleb märkida: (kõik andmed, võttes arvesse Valgevene Vabariigi tervishoiuministeeriumi korraldust 09.28.

patsiendi andmed - perekonnanimi, eesnimi, isanimi, sünniaeg, sugu, aadress, haigusloo number, diagnoos.

biomaterjali analüüsiks saatnud arsti nimi;

biomaterjali võtmise kuupäev ja kellaaeg;

· andma lühikirjeldus saadetud biomaterjal (märkige biomaterjali tüüp), materjali, mis ei vasta deklareeritud materjalile, ei uurita - näiteks röga asemel sülg, plasma asemel seerum;

Biomaterjali võtmise tunnused (võtmiskoht - vere jaoks, uriini jaoks - maht, portsjon, kogumise aeg);

kõik vajalikud uuringud ja mitte ainult " biokeemiline analüüs veri."

Analüüsi suuna allkirjastab arst.

Vältige analüüside dubleerimist.

1.2 Laborirežiimid

Kogu veri peab tulema ainult tsentrifuugis, laborist võetud keemiliselt puhastes katsutites. Erakorralise analüüsi režiimis uuringute jaoks tuleb veri tarnida eraldi, mitte panna lauale koos rutiinsete analüüsidega ilma hoiatuseta. Kiiranalüüsi edastanud osakonna töötaja peab tagama analüüsi aktsepteerimise laboritöötaja poolt.

Kiireloomulised uuringud tehakse 2 tunni jooksul, ainult raskes seisundis patsientidele, kui on vaja erakorralist sekkumist. Kiireloomulise analüüsi tegemiseks eraldatakse eraldi laborant ja laboridiagnostika arst. Uuringute läbiviimine kiiranalüüsi režiimis nõuab suuremat reaktiivide tarbimist ja spetsialistide tööaega ning sellest tulenevalt suuri finantskulusid.

Praegu teeb erakorralise analüüsi labor avariirežiimis järgmisi vereanalüüse:

Hemoglobiini kontsentratsiooni määramine

hematokriti arvutamine

Punaste vereliblede arvu loendamine

Leukotsüütide arvu loendamine

Loendamine leukotsüütide valem

Trombotsüütide arvu loendamine

Valveanalüüs tehakse tööpäeva jooksul - äsja vastuvõetud patsientidele või patsiendi seisundi halvenemisel, mis ei vaja erakorralist sekkumist.

Märkus: Laboratoorsete parameetrite normaalväärtused viitavad tühja kõhuga kogutud materjalile. Seetõttu ei saa kiireloomulise ja valves oleva uuringu tulemuste tõlgendamine olla lihtne võrdlus normaalväärtustega.

Plaanilised uuringud on kõik eelmisel päeval planeeritud uuringud, mille materjal jõuab laborisse hommikul kella 7-9. Täitmise aeg on kuni 6 tundi, mõnel juhul on vajalik pikem analüütiline protseduur.

Töötajate laboriuuringud viiakse läbi töötajate tervisekontrolli eest vastutava arsti korraldusel. Kõigil muudel juhtudel on küsitlus tasuline.

1.3 Kliinilise laborimaterjali ladustamis- ja transporditingimused

Kutseinfektsiooni vältimiseks tuleb igasugust bioloogilist vedelikku käsitleda potentsiaalselt nakkusohtliku materjalina, järgides kõiki asjakohaseid reegleid selle transportimisel, ladustamisel ja käitlemisel. Biomaterjalid alates nakkushaigused tuleks spetsiaalselt märgistada ja käsitseda äärmise ettevaatusega. Kõik HIV-nakkusega patsientide biomaterjalid tuleb märgistada suunaga "kood 120" koos haigusloo numbri kohustusliku viitega.

Saadud bioloogiline vedelik tuleks võimalikult kiiresti laborisse toimetada. Kui on vaja määrata glükoosisisaldust ja happe-aluse seisundi näitajaid, tuleb veri viivitamatult laborisse toimetada.

Kõigil transpordi ja töötlemise etappidel tuleb verd hoida korgiga katsutites, et vältida aurustumist ning saastumist mikroobide ja erinevate ainetega väljastpoolt.

Tarnetorud tuleb asetada vertikaalselt, kaanega ülespoole, mis aitab kaasa proovide ohutusele ja kiirendab trombide teket seerumi vastuvõtmisel, vähendab transportimisel loksutamist ja hemolüüsi ohtu.

Torusid ei tohi ääreni täita. Ilma antikoagulantideta saadud täisverd ei tohi hemolüüsi vältimiseks enne laborisse toimetamist külmkapis hoida.

Tsentrifuugimine toimub hiljemalt 1 tund pärast biomaterjali võtmist.

1.4 Reguleerimisala

Käesolev standardne töökord (edaspidi - SOP) määrab kindlaks protseduuride ruumist (asutuse nimi) ja teistest labori poolt teenindatavatest asutustest laborisse siseneva biomaterjali vastuvõtmise, registreerimise, samuti ebakõlade tuvastamise ja kõrvaldamise korra.

See SOP on mõeldud laborandile ja labori operaatorile.

1.5 Biomaterjali kulleri transportimise protsessi korraldamine ja kulleri vastutus

Külmiku temperatuuri, mis on näidatud auto sõitjateruumi ekraanil, registreerib kuller ajakirjas “Autode külmikute temperatuurirežiimi arvestuse ajakiri” ja ka selles ajakirjas kuller. märgib vahetult enne asutustesse minekut ära oma täisnime, auto registreerimismärgi ja auto biomaterjalile väljumise aja .

Terviseasutusse saabunud kuller läheb selle asutuse registratuuri, kus korjab ära erinevate biomaterjalidega konteinerid. Igale konteinerile on märgitud asutuse nimi ja biomaterjali liik (veri, uriin, väljaheited, tampooniga klaasklaasid, kraabid). Kuller asetab konteinerid horisontaalasendisse masina külmikusse, nagu on näha fotol.

Kuller vastutab konteinerite terviklikkuse, nende ohutuse, nõuetekohase tagamise eest temperatuuri režiim auto külmikus (+4 - +8 o C), samuti asutustest laborisse toimetatud biomaterjali ohutuse tagamiseks. Reisi ajal jälgib kuller auto külmiku temperatuuri, mis kuvatakse autosse paigaldatud ekraanil.

1.6 Biomaterjali vastuvõtmine laboris

Temperatuuri, mis on näidatud auto külmikus konteinerite väljavõtmise ajal, märgib kuller ajakirjas "Autode külmikute temperatuurirežiimi register" vastavas veerus. auto riiginumber. Ja ka samasse logisse märgib juht asutuste biomaterjaliga auto saabumise aja.

Märgitud anumad vereproovide, määrde ja kaabitsatega annab kuller edasi parameedik-laborandile.

Kabinetis avab laborant anuma kaane ja võtab sealt välja verega katseklaasid, määrde- ja kaabitsatega slaidid, kaustad uurimisjuhistega.

Sorteerib veresondid eraldi riiulitesse, lähtudes katsutite tüübist (biokeemilised, hematoloogilised ja koaguloloogilised) ning riiulitele märgitud asutuste nimetustest.

1.7 Biomaterjali ja saatekirjade üleandmine labori vastavatesse osakondadesse

Kabinetis paneb parameedik - laborant riiulid biokeemiliste, immunoloogiliste, koaguloloogiliste uuringute katseklaasidega konteineritesse, millel on märge "biomaterjali ülekandeks" ja viib need tsentrifuugimisele.

Parameedik - laborant helistab hematoloogia ja PCR osakonda, et vastavate osakondade parameditsiinilised laborandid võtaksid biomaterjali.

Seejärel annab uuringute suunad üle registreerimisoperaatoritele.

1.8 Tellimuslehtede registreerimine operaatorite poolt

Registreerimise protseduur:

- operaator loeb saatelehele kleebitud skanneriga vöötkoodi;

- seejärel sisestab operaator LIS-i patsiendi passi andmed: täisnimi, sünniaeg, elukoha aadress ja muud andmed: tellimuse allikas (kohustuslik tervisekindlustus, VHI, sularahamakse, tervisekontroll), asutuse number, osakond, täisnimi uuringu tellinud arsti, diagnoosi, MES-koodi (meditsiiniline ja majandusstandard).

- pärast seda sisestab operaator LIS-i need näitajad, mille raviarst määras, ja salvestab loodud tellimuse LIS-i.

2. Praktiline osa

Linna kliiniline haigla nr 40 avati 1966. aastal ja on praegu ainuke multidistsiplinaarne meditsiinikompleks Nižni Novgorodis, kuhu kuuluvad: haigla, sünnitushaigla, sünnituseelne kliinik, laste- ja täiskasvanute kliinik. See on Nižni Novgorodi osariigi kirurgiaosakonna peamine kliiniline baas, spetsialistide täiendõppe ja erialase ümberõppe keskus. meditsiiniakadeemia, mis on tegutsenud haigla baasil alates selle avamisest. Haigla nr 40 funktsionaalne omadus on peaaegu igasuguse patoloogiaga patsientide vastuvõtt erakorralistel juhtudel ööpäevaringselt. Kiirabi toimetab päevas üle 100 patsiendi.

Haiglas ja tema struktuurijaotused kõik loodud vajalikud tingimused osutada patsientidele õigeaegset abi ja nende kvaliteetset ravi. Siin kasutatakse ja täiustatakse enesekindlalt traditsioonilisi meetodeid ning aktiivselt juurutatakse uusimaid meditsiinitehnoloogiaid. Kaasaegseid diagnostikaseadmeid meisterdatakse kõikjal. Viimase kahe aasta jooksul sai haigla tervishoiu moderniseerimisprogrammi raames 216 ühikut meditsiinitehnikat, sealhulgas kaasaegseid endoskoop-, labori- ja ultrahelidiagnostika seadmeid, mis võimaldasid teha keerukamaid sekkumisi hepatopankreatoloogias, koloproktoloogias ja fleboloogias. .

Juhtivad eksperdid osalevad aktiivselt Venemaa ja rahvusvahelise tasandi erialaseminaride, konverentside, sümpoosionide töös. labori kliiniline biomaterjal

Linnahaigla nr 40 on üldkliiniline baas, kus on kaasaegne teaduse arenguid ja meetodeid rakendatakse praktikas. Siin on pikka aega ja viljakalt tehtud ühistööd Nižni Novgorodi Riikliku Meditsiiniakadeemia spetsialistide süvauuringute ja erialase ümberõppe keskuse kirurgiaosakonnaga. Selle korraldaja professor Igor Leonidovitš Rotkov asutas kirurgiakooli, kus osalesid peaaegu kõik haigla kirurgid ja täna jätkavad nad oma kogunenud kogemuste arendamist, tutvustades uusi arenguid ja tehnikaid. Haigla baasil loodi linna fleboloogiakeskus. Lastekirurgia osakond on Nižni Novgorodi pediaatriainstituudi filiaalina juhtinud pediaatrilise gastroenteroloogia teaduslikku osakonda juba mitu aastakümmet. Sünnitusmaja baasil on sünnitusabi ja günekoloogia osakonnad arstide täiendamiseks ja NSMA üliõpilaste koolitamiseks. Siin täiendavad oma oskusi spetsialistid paljudest Venemaa piirkondadest. Praktiseerivate teadlaste ja haiglaarstide ühine töö aitab kaasa nende oskuste kasvule ning innovatsioon erinevates meditsiinivaldkondades võimaldab saavutada unikaalseid tulemusi patsientide ravis.

Linna töö tulemustest kliiniline haigla Kaitsti 40, 9 doktori- ja 29 magistritööd. Haigla spetsialistide poolt välja töötatud operatsioonimeetodite, diagnostika ja kasulike mudelite kohta on laekunud üle 70 autoriõiguse tunnistuse ja patendi.

Arstide meeskond hindas kõrgelt 2012. aasta Nižni Novgorodi linnaauhinna autasu meditsiini valdkonnas. Töö on pühendatud ühele kõige pakilisemale ja keerulisemale kirurgiaprobleemile - flebotromboosi ravile. alajäsemed, GBUZ NO "Linna kliiniline haigla nr 40" alusel flebotromboosihaigetele viimase viieaastase vaatluse ja erakorralise ja plaanilise kirurgilise abi osutamise perioodi eest linna fleboloogiakeskuse tingimustes.

Haigla struktuuri kuuluvas sünnitusmajas on 205 voodikohta ja see on Eesti suurim. Nižni Novgorodi piirkond. Praegu täidab see piirkondliku perinataalkeskuse funktsiooni, võttes aastas 4500-5000 sündi. Kogu sünnitusarstide-günekoloogide töö eesmärk on vähendada rasedate raseduse katkemise ja üleküpsuse juhtude arvu, saavutada loomulikku sünnitust ja parandada vastsündinute elulemust.

Alates jaanuarist 2010 müüride vahel täiskasvanute polikliinik Tervisekeskus toimib edukalt, tunnustatud kui üks parimaid piirkondlikul tasandil. Oma töökogemust tutvustas keskuse juht Ülevenemaalisel Foorumil - "Terve rahvas on Venemaa õitsengu alus."

2012. aastal korraldati arstiabi kättesaadavuse suurendamiseks kõrvalises piirkonnas perearsti kabinet, mis tegutseb edukalt täiskasvanute polikliiniku struktuuris.

Rohkem kui tuhat asutuse töötajat, sealhulgas arstid, õed, laborandid, õed, tehnilised töötajad, loovad oma raske töö, hoolitsuse ja soojusega humanismi ja halastuse õhkkonna, mis on iseloomulik GBUZ NO "City" töötajatele. Kliiniline haigla nr 40".

Praktika käigus õpiti selgeks kogu biomaterjali vastuvõtmise ja registreerimise protsess.

1. biomaterjali ja vormide vastuvõtmine.

2. Biomaterjali uurimine

3. Tulemuste fikseerimine vormile

4. Tulemuse arvestus analüüsipäevikutes

5. Biomaterjali utiliseerimine

Järeldus

Biomaterjali vastuvõtu, märgistamise ja registreerimise korralduse kontrollimise peamine vorm on perioodiline välis- ja sisekontroll. Kuid seda kontrollivormi ei saa pidada tõhusaks. Laboratoorsete uuringute selle etapi kontrollimise probleem on tänapäeval üks kaasaegse laborimeditsiini tõsisemaid probleeme.

Kõige tõhusam ja tõhusam samm on luua standardtingimused patsiendi bioloogiliste proovide võtmiseks, transportimiseks ja säilitamiseks (vaakum- või muude süsteemide kasutamine). Selliste süsteemide juurutamine praktikasse ei mõjuta laboriuuringute kõiki etappe ja üldiselt viib labori korralduse teisele tasemele. Nende kasutamine mitte ainult ei hõlbusta korraldamist ja soodustab oluliselt eelanalüütilise etapi standardimist, vaid loob ka tingimused, mis on vajalikud kaasaegsete laborisüsteemide kasutuselevõtuks. Analüsaatorite olemasolul saab neid kasutada esmaste katseklaasidena, mis lihtsustab oluliselt laboriuuringu analüütilist etappi.

Majutatud saidil Allbest.ru

...

Sarnased dokumendid

Kliinilise laboratoorse diagnostika mikrobioloogiliste uuringute põhiülesanded. Bakterioloogialabori seadmed, suure jõudlusega automatiseeritud seadmed mikroorganismide tuvastamiseks, mikrobioloogilise diagnostika standardiseerimine.

abstraktne, lisatud 09.10.2010

Süüfilise edasikandumise viisid - suguhaigused nakkushaigus naha, limaskestade kahjustustega, siseorganid, luud, närvisüsteem haiguse järjestikuste etappidega. Haavatavused hambalabor enne nakatumist.

esitlus, lisatud 27.04.2016

Kliinilise diagnostika labori tegevuse iseloomustus kaasaegsetes tingimustes, personali tegevuse hindamine ja selle efektiivsuse tõstmise tehnoloogiad. Õendustöötajate töö kirjeldamine laboris, soovituste väljatöötamine optimeerimiseks.

kursusetöö, lisatud 28.06.2016

vene keel määrused ravimite tootmise reguleerimine. Ravimite kvaliteedikontrolli katselabori struktuur, funktsioonid ja põhiülesanded. Vene Föderatsiooni õigusaktid mõõtmiste ühtsuse tagamise kohta.

kasutusjuhend, lisatud 14.05.2013

Tutvumine kaasaegsete proteeside valmistamisel kasutatud materjalidega. Automatiseeritud töökorralduse skeemi uurimine, mis võimaldab valmistada CAD\CAM tehnoloogial proteese. Hambalabori automatiseerimise eelised.

esitlus, lisatud 11.10.2015

Hambalabori põhielemendiks on hambatehniku töölaud. Selle laua disain, selle varustus ja valgustus. Kontoris kasutatavate seadmete parameetrid. Kõige olulisemad kriteeriumid, millest sõltub valumasina jõudlus.

esitlus, lisatud 14.03.2016

Õiguslik alus jaoks kliinilised uuringud põhimõtteliselt uus ja varem kasutamata ravimid. Maailma Arstide Ühenduse Helsingi deklaratsioonis sõnastatud kliiniliste uuringute eetilised ja õiguslikud põhimõtted.

esitlus, lisatud 25.03.2013

Mikrobioloogilise labori töö etapid ja igale neist kulutatud aeg. Normatiivdokumendid. Üldnõuded bioloogilise materjali proovide kogumisele ja kohaletoimetamisele mikrobioloogilisteks uuringuteks. Testitulemuste tõlgendamine.

esitlus, lisatud 26.04.2016

Üldsätted Kasahstani Vabariigi tervishoiuministri korraldus "Farmakoloogiliste ja ravimite kliiniliste uuringute ja (või) testimise juhendi kinnitamise kohta". Kliiniliste uuringute eetilise hindamise põhimõtted.

esitlus, lisatud 22.12.2014

Sissejuhatus skisofreenia peamistesse sümptomitesse. Patsiendi vaimse, somaatilise ja neuroloogilise seisundi analüüs. Kaalutlus kliinilised meetodid vaimuhaiguste uurimine. üldised omadused laboriuuringud.

Kliinilise materjali valiku teostavad meditsiinitöötajad, järgides epideemiavastase režiimi reegleid, ainult steriilsete ühekordselt kasutatavate instrumentidega (süstlad, vastavad sondid, tsütoharjad jne), ühekordselt kasutatavates kinnastes.

Koguge materjal valitud lookusest võimalikult täielikult kokku, kasutades sobivaid aplikaatoreid – sondid, tsütoharjad (et tagada kliinilise proovi adekvaatsus).

Säilitage saadud materjal (mikroorganismide DNA/RNA), kasutades PCR labori poolt pakutavat usaldusväärset transpordikeskkonda ja säilitusaineid. Kliinilise materjali transportimise ja säilitamise sööde tagab RNA ja DNA stabiilsuse toatemperatuuril kuni 28 päevaks.

Võetud materjal asetada EDTA-ga (veri) vaakuttidesse, ühekordselt kasutatavatesse keemiliselt puhastesse Eppendorfi tuubidesse (äigepreparaadid, tserebrospinaalvedelik, biopsia jne). Materjali kogumise põhitingimus on vältida DNaaside ja ribonukleaaside sattumist proovi, kuna ribonukleaasid ja DNaasid on ensüümid RNA ja DNA lagundamiseks. Need on väga stabiilsed keskkond talub pikaajalist keetmist. Peamine nukleaaside allikas on nahka, tolmuosakesed. Plasttorud ja otsikud peavad olema märgistatud "DNase, RNase-free" (nukleaasivaba).

Vahetult pärast proovide võtmist sulgege katseklaasid, viaalid kliinilise materjaliga tihedalt, puudutamata nende sisepinda ja kaante sisepinda.

Kliinilise materjaliga töötades ärge tehke katseklaaside, viaalide avamisel järske liigutusi ning vältige pritsimist ja pritsimist, mis võib viia proovide ja tööpindade saastumiseni.

Ristsaastumise vältimiseks hoidke ja transportige proove eraldi kilekotis või riiulites. Kui proovi ülekandmine on vajalik, kasutage automaatseid mikropipette, millel on vahetatavad ühekordselt kasutatavad aerosoolitõkkega otsad.

Enne PCR laborisse transportimist tuleks valitud biomaterjali hoida temperatuuril 2–4 °C mitte üle 48 tunni. Proovide kogumisest PCR analüüsini kuluv aeg on vajalik minimeerida. Proovide transport toimub jahutuskottides, termokonteinerites, termokotiga termostes, jääs või kuivas jääs.

Veri, plasma, seerum

Vereproovide võtmine on soovitatav vaakumsüsteemide abil. Selliste süsteemide kasutuselevõtt võimaldab standardiseerida verega manipuleerimisi, avaldab positiivset mõju laboriuuringute kõikidele etappidele ja üldiselt viib labori töö üle teisele, kõrgemale kvaliteeditasemele. Nende kasutamine tagab personali kaitse infektsioonide eest, vähendab vereproovide võtmisele kuluvat aega, sellega kaasneb palju vähem hemolüüsi, võimaldab säilitada vereproovide steriilsust ja transportida neid hermeetiliselt.

Venepunktuuri soovitatakse teha tühja kõhuga kubitaalveenist spetsiaalsesse antikoagulandiga vaakumtorusse, misjärel keeratakse toru mitu korda segamiseks ümber. Katseklaase verega hoitakse külmkapis +4 °С - +8 °С juures. Vere maksimaalne säilivusaeg on 1 päev (mitte külmutada!). Pikaajalise säilitamise vajaduse korral tuleb võtta 1 ml seerumit või vereplasmat ja hoida temperatuuril -16o -20o C mitte üle 2 nädala.

PCR diagnostikas kasutatavate vaakumsüsteemide omadused:

Vakuetid EDTA-ga (6%) – kasutatakse kvalitatiivseks ja kvantitatiivseks uuringuks. EDTA-antikoagulant fikseerib hästi raku nukleiinhapped.

Kvalitatiivseks ja kvantitatiivseks uuringuks kasutatakse naatriumtsitraadiga (3,8%) vakuette. Ei sobi pikaajaliseks transportimiseks, sest tsitraat on hea toitainekeskkond kõrvalise mikrofloora jaoks.

Antikoagulantideta vakuetid (vereseerum) - kasutatakse kvalitatiivseks uurimiseks. Vereseerumi kasutamine kvantitatiivseteks uuringuteks on ebasoovitav, kuna. osa nakkustekitajast settib trombi, samal ajal väheneb võimalus määrata selle kvantitatiivne sisaldus veres.

Hepariiniga vakuetid ei sobi kategooriliselt PCR reaktsioonide jaoks. Hepariin on polüanioon, nagu DNA, seega konkureerib see PCR reaktsioonis DNA-ga.

Vereanalüüsi optimaalne aeg on vahemikus 1 kuni 4 tundi pärast võtmist. Vahemikus 5 kuni 30 minutit toimub trombotsüütide ajutine kohanemine antikoagulandiga ja nende agregatsioon, mis võib viia nende veresuhkru eksliku vähenemiseni. vereproov.

Ei ole soovitav verd uurida hiljem kui 8 tundi pärast võtmist, sest. mõned rakkude omadused muutuvad: leukotsüütide maht väheneb, erütrotsüütide maht suureneb, mis lõppkokkuvõttes toob kaasa ekslikud mõõtmistulemused ja tulemuste ebaõige tõlgendamise. Vere säilitamise päeva jooksul püsivad stabiilsed ainult hemoglobiini kontsentratsioon ja trombotsüütide arv.

Verd ei saa külmutada. K 2 EDTA-ga kapillaarverd tuleb hoida toatemperatuuril ja analüüsida 4 tunni jooksul pärast kogumist.

Uuringute kvalitatiivse tulemuse tagamiseks on vaja enne analüüsi rangelt kontrollida proovide säilitamise aega ja tingimusi.

Kui on vaja teha hilinenud analüüs (transport pikkadel vahemaadel, seadme tehniline rike jne), hoitakse vereproove külmkapis (4 o - 8 o C) ja uuritakse 24 tunni jooksul. Siiski tuleb arvestada, et rakud paisuvad ja nende mahuga seotud parameetrid muutuvad. Praktiliselt tervetel inimestel ei ole need muutused kriitilised ega mõjuta kvantitatiivseid parameetreid, kuid patoloogilised rakud, võib viimane mõne tunni jooksul pärast vereproovi võtmist muutuda või isegi kokku kukkuda.

Vahetult enne uuringut tuleb verd mitu minutit põhjalikult segada, et lahjendada antikoagulant ja jaotada moodustunud elemendid plasmas ühtlaselt. Proovide pikaajaline pidev segamine kuni nende uurimise hetkeni ei ole soovitatav patoloogiliste rakkude võimaliku vigastuse ja lagunemise tõttu.

Vereanalüüs automaatse analüsaatoriga tehakse toatemperatuuril. Külmkapis säilitatav veri tuleb esmalt soojendada toatemperatuurini, kuna madalal temperatuuril suureneb vere viskoossus ja vererakud kipuvad kokku kleepuma, mis omakorda toob kaasa segunemise halvenemise ja mittetäieliku lüüsi. Külma vere uurimine võib leukotsüütide histogrammi kokkusurumise tõttu põhjustada "häiresignaalide" ilmumist.

Hematoloogiliste uuringute tegemisel vereproovi võtmise kohast märkimisväärsel kaugusel tekivad paratamatult probleemid, mis on seotud ebasoodsate transporditingimustega. Analüüside kvaliteeti võivad mõjutada mehaanilised tegurid (raputamine, vibratsioon, segunemine jne), temperatuuritingimused, lekke tõenäosus ja proovide saastumine. Nende põhjuste kõrvaldamiseks on veresontide transportimisel soovitatav kasutada hermeetiliselt suletud plasttorusid ja spetsiaalseid isotermilisi transpordikonteinereid. Transpordi ajal ei ole proovi (natiivse materjaliga) ja saatelehe kokkupuude bioloogilise ohutuse reeglite kohaselt lubatud.

^ 4.3. Bioloogilise materjali vastuvõtt ja registreerimine

Venoosse vereproovidega tuubid toimetatakse laborisse nende võtmise päeval spetsiaalsetes bioloogilise materjali kohaletoimetamiseks mõeldud kottides, milles tuubid peavad olema vertikaalses asendis ja kaugemal transportimisel spetsiaalsetes konteinerites. .

Materjali saav laboritöötaja peab kontrollima:

Saatekirja õigsus: saatelehele on märgitud uuritava andmed (perenimi, ees- ja isanimi, vanus, haiguslugu või ambulatoorse kaardi number, osakond, diagnoos, teraapia);

Katseklaaside märgistamine vereproovidega (need peavad olema märgistatud patsiendi koodi või perekonnanimega, identsed uuringu materjali saatmise vormil oleva koodi ja perekonnanimega). Laborant peab registreerima tarnitud materjali, märkima katseklaaside arvu.

^ 4.4 Vere rakulise koostise arvutamine hematoloogilisel analüsaatoril

Vere rakulise koostise arvutamine hematoloogilisel analüsaatoril peab toimuma rangelt vastavalt seadme juhistele.

Hematoloogilise analüsaatoriga töötades peaksite:

Kasutage K-2 EDTA-ga stabiliseeritud verd soovitatud vahekorras konkreetsete soola- ja ühekordselt kasutatavate hematoloogiliste katsutite jaoks (tavaline või vaakum);

Enne analüüsimist segage katsuti hoolikalt, kuid põhjalikult verega (soovitav on kasutada vereproovide segamise seadet - selleks otstarbeks rotomix);

Kasutage ettenähtud viisil registreeritud reaktiive; reaktiivide vahetamisel teise tootja toodete vastu kontrollige ja seadistage instrumendi kalibreerimine;

Käivitage seade, jälgides kõiki loputusetappe, saavutades kõigi kanalite indikaatorite nullväärtused (taust);

Pöörake tähelepanu instrumentide teadetele võimalike süstemaatiliste vigade kohta: pidage meeles, et MCHC kasv on suurem normaalväärtused, tavaliselt mõõtmisvea tulemus;

Kui tuvastatakse viga, on hädavajalik põhjus kõrvaldada, ärge töötage rikkis seadmega;

Viige läbi kvaliteedikontrolli protseduur vastavalt vastavale programmile. koos tulemuse hinnanguga;

Töötage mõtestatult, võrreldes saadud tulemusi kliiniline tunnus patsiendi proovid;

Pärast mõõtmiste lõppu loputage analüsaatorit põhjalikult;

Kui seade on peatatud pikaajaline kindlasti kõik konserveerimistoimingud läbi viima (võimalusel koos hooldusinseneriga);

Tehniliste probleemide korral peaksite abi otsima litsentsitud ettevõtte hooldusinsenerilt Hooldus; Ärge usaldage töid väljaõppeta töötajatele.

Hematoloogilise analüsaatoriga tööle asudes tuleks arvestada analüüsitavate parameetrite mõõtmise lineaarsuse piiridega. Proovide hindamine analüüsitud parameetrite väärtustega, mis ületavad mõõtmise lineaarsuse piiri, võib viia ekslike tulemusteni. Enamikul juhtudel kuvab analüsaator hüpertsütoosiga proovide analüüsimisel mõõdetud parameetri väärtuse asemel "D" (lahjendus), mis viitab proovi lahjendamise ja uuesti mõõtmise vajadusele. Lahjendada tuleb seni, kuni kahel järgmisel lahjendusel saadakse sarnased lõpptulemused.

^ PRI me R ─ Hüperleukotsütoosiga patsiendi proovi analüüs kolmel erineval hematoloogilisel analüsaatoril on toodud tabelis.

Tabel 3

¦ Hüperleukotsütoosi loendamise tulemused kolme erineva hematoloogilise analüsaatoriga

^ Hematoloogilised analüsaatorid	Proovi lahjendusmäär				Lõppväärtus
	^ Terve veri	1:1	1:3	1:4	WBC
1	D	274,5	274,5	143,1	715,5
2	322,6	253,2	177,7	141,8	709,0
3	D	D	168,3	139,1	695,5

Tabelist on näha, et täisverd analüüsides andis ainult üks analüsaator (2.) leukotsüütide arvu digitaalse väärtuse, ülejäänud kaks näitasid proovi lahjendamise vajadust. Järgnev proovi samm-sammult mõõtmine kolmes lahjenduses võimaldas saavutada lähedased lõpptulemused kõigis seadmetes ainult lahjendusega 1:3 ja 1:4. Seega oli leukotsüütide üldarv 700,0 - 710,0 x 10 9 /l, mis on enam kui 2 korda kõrgem algväärtusest, mis saadi täisveres 2. analüsaatoril ja 1,5 - lahjendusel 1:1 1. ja 1. 2. analüsaatorid.

^ Hematoloogiliste analüsaatorite kalibreerimine

Kalibreerimine viitab selle tulemusel analüsaatori reguleerimise protseduurile

Mis saavutab vea süstemaatilise komponendi võrdsuse nulliga (null bias) või kinnitab, et nihe on null, võttes arvesse kalibreerimisviga. Hematoloogiliste analüsaatorite kalibreerimist saab läbi viia kahel põhilisel viisil:

täisvere jaoks;

Põhineb sertifitseeritud väärtustega stabiliseeritud vereproovidel.

^ 5.1 Täisvere kalibreerimine

Täisvere kalibreerimist saab läbi viia võrdlusanalüsaatoriga, mille kalibreerimine on kontrollitud ja mida võib võtta originaalina.

Võrdluseks võrdlusanalüsaatoriga kalibreerimiseks kasutatakse 20 patsiendi veenivere proovi, mis on juhuslikult valitud referentanalüsaatorit omava labori igapäevasest uurimisprogrammist. Veri tuleb võtta antikoagulandi K 2 EDTA-ga vaakumtorudesse. Pärast võrdlusanalüsaatoriga analüüsimist toimetatakse veretorud laborisse kalibreeritava seadmega analüüsimiseks. Aeg võrdlusanalüsaatori ja kalibreeritud analüsaatoriga tehtud mõõtmiste vahel ei tohi ületada 4 tundi. Kalibreeritava instrumendi kalibreerimisproovide analüüs tuleb läbi viia samamoodi nagu patsiendi proovide analüüs. Saadud tulemused kantakse tabelisse lisas 1 toodud kujul. Nende tulemuste põhjal määratakse vastavad kalibreerimistegurid, mis on arvuliselt võrdsed graafiku alguspunkti läbivate kalibreerimissirgete kalde koefitsientidega.

Kalibreerimistegurid arvutatakse arvutis, kasutades programmi EXCEL, mis sisaldub mis tahes versiooni Microsoft OFFICE paketis. Kalibreerimistegurite arvutamiseks selles programmis koostatakse hajuvusdiagramm, kus mõõdetud väärtused kantakse piki X-telge, võrdlusväärtused piki Y-telge ja regressioonijoon seatakse läbi algpunkti. Programm tõmbab kalibreerimisjoone ja määrab selle kalde, mis on soovitud kalibreerimisfaktor. Kui tuvastatakse jämedad vead - punktid, mis on graafikul kalibreerimisjoonest oluliselt eraldatud, tuleb need arvutusest eemaldada (EXCELi tabelist kogu rida kustutada). Saadud kalibreerimistegur kantakse 1. liite tabelisse ja seda kasutatakse seadme kalibreerimise käsitsi reguleerimiseks vastavalt selle kasutusjuhendile.

^ Kalibreerimine sertifitseeritud väärtustega stabiliseeritud vereproovide suhtes

See kalibreerimismeetod põhineb kaubanduslikel kalibreerimis- ja kontrollmaterjalidel, mis on kunstlik segu stabiliseeritud inimese erütrotsüütidest ja fikseeritud inimese või looma rakkudest, mis jäljendavad leukotsüüte ja trombotsüüte. Nende materjalide komponentide bioloogiliste omaduste olulise erinevuse tõttu looduslikust verest sõltuvad hematoloogiliste parameetrite sertifitseeritud väärtused konkreetsest analüsaatori tüübist.

Võimaluse korral tuleks kasutada kalibraatoreid, mis on tootja poolt spetsiaalselt loodud teatud tüüpi analüsaatorite kalibreerimiseks. Kaasaegsete hematoloogiliste kalibraatorite seadeväärtuse vead vastavad üldiselt meditsiinilistele nõuetele. Kuid mitte kõigil analüsaatoritüüpidel pole selliseid kalibraatoreid. Lisaks ei ole piiratud säilivusaja tõttu (tavaliselt mitte rohkem kui 45 päeva) alati võimalik hankida proove, mille kehtivusaeg ei ole lõppenud.

Kontrollmaterjalid ei ole tootja poolt ette nähtud kalibreerimiseks: väärtuste tolerantsid on palju laiemad, valideerimis- ja tootmiskontrolli meetodid ei ole nii ranged kui kalibraatorite puhul. Kalibreerimisel saab kontrollmaterjale kasutada ainult ühe teabeallikana seadme metroloogiliste omaduste kohta.

Siiski tuleb meeles pidada, et kui kalibreerimiseks kasutatakse nii kontrollmaterjale kui ka kalibraatoreid, on proovi ettevalmistamise ja analüsaatorite töö omadustel oluline mõju süstemaatilise vea komponentidele. Neid mõjutegureid ei saa kaubanduslike materjalidega kalibreerimisel arvesse võtta. Sellest tulenevalt tuleb kõikidel juhtudel teostatud kalibreerimist kontrollida, analüüsides patsiendi proovides saadud tulemuste statistikat (erütrotsüütide indeksid, normaalväärtuste intervallid).

5.2.1 Hematoloogiliste analüsaatorite kalibreerimisintervallid

Kalibreerimisintervalli nõuded leiate tavaliselt analüsaatori kasutusjuhendist. Reeglina on kalibreerimine vajalik pärast remonti või kui ettevõttesiseste kvaliteedikontrolli protseduuride käigus tuvastatakse oluline triiv.

5.2.2 Kalibreerimisprotseduur

Kalibreerimisprotseduur viiakse läbi vastavalt analüsaatori kasutusjuhendile.

5.2.3 Kalibreerimistulemuste kontrollimine

See kontroll seisneb kalibreerimisproovi analüüsis vahetult pärast kalibreerimist. Teostatud kalibreerimine on aktsepteeritud, kui analüüsi tulemused vastavad kalibreerimisväärtustele, võttes arvesse analüsaatori analüütilist varieerumist.

5.2.4 Kalibreerimise kontrollimine RBC indeksite abil

See kalibreerimise kontrollimise ja täpsustamise meetod kasutab tõsiasja, et patsientide erütrotsüütide indeksite - MCHC, MCH ja MCV - keskmised väärtused on üsna väikesed ja seetõttu saab neid tõhusalt kasutada kalibreerimise kontrollimiseks ja edasiseks kvaliteedikontrolliks. Soovitatav proovide arv keskmistamiseks on 20. Keskmise MCHC määramiseks võib kasutada mis tahes patsiendi proovi, samas kui aneemiaga patsiendid tuleks keskmisest MCHC ja MCV hulgast välja jätta.

Paljudel kaasaegsetel hematoloogilistel analüsaatoritel on sisseehitatud programmid voolu keskmiste arvutamiseks, mis lihtsustab oluliselt andmetöötlust.

Erütrotsüütide indeksite sihtväärtused, mis on keskmistatud 20 18–60-aastaste patsientide proovi kohta, olenemata soost, on toodud tabelis 4.

Tabel 4

Erütrotsüütide indeksite sihtväärtused

Kui saadud keskmised väärtused on väljaspool kontrolltolerantsi, tähendab see, et MCV või Hgb või RBC kalibreerimist tuleb korrigeerida.

Ebarahuldava kalibreerimise põhjuste kindlaksmääramisel erütrotsüütide parameetrite uuringust kaubanduslike kalibreerimis-/kontrollmaterjalide kasutamisel tuleks arvesse võtta järgmist materjalide sertifitseeritud väärtuste usaldusväärsuse hinnangut:

Kõige täpsem ja ajaliselt stabiilsem parameeter on erütrotsüütide kontsentratsioon;

Hgb on stabiilne parameeter, kuid see võib sõltuda kasutatavatest reagentidest (näiteks tsüaniidi või tsüaniidivaba);

Kõige ebastabiilsem parameeter on MCV. MCV väärtus kipub muutuma kogu materjali säilivusaja jooksul üsna laias väärtusvahemikus. MCV kalibreerimise täpsustamisel on erütrotsüütide indeksite keskmiste analüüsist saadud andmed ülimuslikud stabiliseeritud vereproovide sertifitseeritud väärtuste suhtes.

Eeldades, et RBC kalibreerimine on õige, näitab tabel 5 võimalikud põhjused indeksite keskmiste väärtuste väljumine kontrolltolerantsi piiridest.

Tabel 5

Erütrotsüütide indeksite keskmiste väärtuste ületamise põhjused

Erütrotsüütide indeksid	Keskmine indeksi väärtus	Keskmine indeksi väärtus	Keskmine indeksi väärtus	Keskmine indeksi väärtus
MCHC	Piiri all	Piiri kohal	Piiri kohal	Piiri all
MCH	tolerantsi piires	tolerantsi piires	Piiri kohal	Piiri all
MCV	Piiri kohal	Piiri all	tolerantsi piires	tolerantsi piires
Põhjus	Ülehinnatud MCV	alahinnatud MCV	Kõrge Hgb	Madal Hgb

Kogumise, ladustamise ja transportimise juhised

bioloogiline materjal laboriuuringuteks

Bioloogiline materjal peab olema märgistatud katseklaasides (konteinerites) ja kaasas peab olema täidetud individuaalne saatekiri ühes eksemplaris.

Saatekiri tuleb hoolikalt, loetavalt täita, märkides ära järgmised andmed: kuupäev, sondi number, biomaterjali uurimisele saatnud tervishoiuasutuse nimi, materjali võtnud arsti nimi; Patsiendi nimi, vanus ja sugu, esialgne diagnoos; raseduse ajal - rasedusaeg.

Bioloogilise materjali vastuvõtmine:

PCR ja immunokeemilised vereanalüüsid- Koos 09:00 enne 18:00 välja arvatud nädalavahetused ja pühad.

Bakterioloogilised uuringud- Koos 09:00 enne 11:00 välja arvatud reeded, nädalavahetused, pühad ja riigipühad.

patogeenide tuvastamiseks PCR abil

1.1.1. Biomaterjal võetakse mikroorganismide eeldatavast elupaigast ja nakkuse arengust.

1.1.2. Kogutud materjali kogus peaks olema väike. Liigne eritis, lima ja mäda kahjustavad DNA ekstraheerimise kvaliteeti ning aitavad kaasa DNA lagunemisele ladustamise ja transportimise ajal.

1.1.3. Patsiendilt vatitiku või harjaga sondiga võetud biomaterjali sisestamisel puhverlahusega Eppendorfi tuubi on vajalik:

Jälgige steriilsust;

Enne tampoonile (pintslile) kogutud biomaterjali lahusesse kastmist määrige see katseklaasi kuivale seinale, seejärel niisutage tampoon (pintsel) lahuses ja peske sondi pöörates kogu materjal torust põhjalikult maha. katseklaasi ja tampooni (harja) sein;

Võimalusel suruge tampooni vastu katseklaasi seina, eemaldage sond koos tampooniga (harjaga) ja sulgege katseklaas.

1.2. Meetodid biomaterjali võtmiseks PCR-uuringuks

1.2.1. Kraabid. Kraapimiseks kasutatakse ühekordselt kasutatavaid steriilseid sonde, millel on suurenenud adsorptsiooniga vatitups ehk “harjad”, harvem Volkmanni lusikad, väikesed kõrvalusikad vms veidi tömpide servadega instrumente. Kraapimisliigutused materjali kogumiseks. Uuritav materjal peaks sisaldama võimalikult palju epiteelirakke ning minimaalses koguses lima, verd ja eksudaadi lisandeid. Viige materjal puhverlahusega steriilsesse Eppendorfi katsutisse (vt punkt 1.1.).

Emakakaela kanalist kraapimine: enne kraapimist on vaja eemaldada liigne lima steriilse vatitupsuga, töödelda emakakaela steriilse soolalahusega. Sisestage sond emakakaela kanalisse 0,5-1,5 cm sügavusele, vältides kokkupuudet tupe seintega ja koguge materjal kraapiva liigutusega (mitte vereni). Väike hulk punaseid vereliblesid proovis ei mõjuta analüüsi tulemust. Emakakaela erosiooni korral võetakse materjal terve ja muutunud koe piirilt.

Ureetra kraapimine: sisestage sond ureetrasse (meestel - 2-4 cm sügavusele) ja koguge materjal mitme pöörleva liigutusega. Eelõhtul enne materjali võtmist on provokatsioon lubatud (vürtsikas toit, alkohol jne). Enne proovi võtmist on soovitatav hoiduda urineerimisest 1-2 tundi. Küllusliku olemasolul mädane eritis kraapimine tuleb teha hiljemalt 15 minutit pärast urineerimist.

Sidekesta kraapimine võtke pärast silma eelnevat tuimastamist 0,5% dikaiini lahusega. Pärast silmalau pööramist kasutage vatitikuga (või silma skalpelliga) sondi, et koguda sidekesta epiteelirakud.

Pärasoole kraapimine: sisestage sond pärakusse 3-4 cm sügavusele ja koguge materjal pöörleva liigutusega kokku.

1.2.2. Insuldid. Kasutage vatitiku või harjaga ühekordselt kasutatavat steriilset sondi, kasutades väikest kogust eritist (tupe võlvidest, neelust, ninaneelust jne) ja viige see puhverlahusega steriilsesse Eppendorfi katsutisse (vt jaotist). 1.1.).

1.2.3. Veri. PCR testimiseks peab veri olema emakeelena(pole kokku keeratud).

Koguge veri aseptiliselt, veenipunktsiooniga - kaubamärgiga katseklaasi (2-3 ml) EDTA antikoagulandiga ( hepariini ei tohi kasutada antikoagulandina!), segage ettevaatlikult, keerates toru ettevaatlikult ümber.

EDTA-ga veri on biomaterjal järgmised rühmad uuring:

- geeniuuringud(vereproovi võtmise hetk ei oma tähtsust).

- nakkusetekitajate tuvastamine(kõige informatiivsemad on külmavärinate ajal võetud proovid, kõrgendatud temperatuur st arvatavasti vireemia või baktereemia ajal).

1.2.4. Uriin. Koguge hommikune esimene või keskmine uriinikogus vähemalt 10 ml tühja steriilsesse anumasse. Kui uriiniproovi võetakse päevasel ajal, siis enne seda ei tohi patsient urineerida 1,5-3 tundi.

1.2.5. Röga. Desinfitseerige hommikul suuõõne ja kõri (loputage lahusega joogisoodat). Koguge röga tühja steriilsesse laia suuga viaali.

1.2.6. Biopsia. Materjal tuleks võtta nakkustekitaja väidetava asukoha tsoonist, kahjustatud koest või kahjustusega piirnevast piirkonnast. Asetage biopsia puhverlahusega steriilsesse Eppendorfi katsutisse.

1.2.7. Sülg, maomahl, tserebrospinaalvedelik, sünoviaalvedelik. Sülg (1-5 ml), maomahl (1-5 ml), tserebrospinaalvedelik (1-1,5 ml) - asetage tühja steriilsesse katseklaasi (konteiner).

1.2.8. Mahl eesnäärme. Pärast eesnäärme massaaži kogutakse mahl 0,5-1 ml tühja steriilsesse katseklaasi (konteiner). Kui mahla ei ole võimalik saada, kogutakse kohe pärast massaaži esimene portsjon uriini koguses, mis ei ületa 10 ml (see osa sisaldab eesnäärme mahla).

1.2.9. väljapesemised, bronhoalveolaarne loputus(PALL). Steriilse vatitiku ja 5-7 ml soolalahusega pestakse näiteks endoskoobi või bronhoskoobi otsast ning 0,5-5 ml pesu pannakse tühja steriilsesse katsutisse (konteinerisse).

1.2.10. Väljaheited. Väljaheite sisse asetatakse vatitikuga sond ja seda veidi pööratakse, püüdes kinni väikese koguse materjali. Seejärel asetatakse materjal puhverlahusega steriilsesse Eppendorfi katsutisse.

1.3. PCR-uuringute jaoks bioloogilise materjali säilitamise reeglid

1.3.1. Tampoonid, kaabitsad:

Külmkapis (+4ºС - +8ºС) kuni 7 päeva;

Sügavkülmas (-20ºС) kuni 14 päeva (lubatud on ainult üks sulatus!).

1.3.2. Uriin: külmikus (+4ºС - +8ºС) mitte rohkem kui 1 päev;

1.3.3. Veri EDTA-ga: külmikus (+4ºС - +8ºС) - nakkusetekitajate määramiseks - mitte rohkem kui 1 päev; jaoks geneetilised uuringud- kuni 4 päeva. Külmutamine ei ole teema.

1.3.4. Röga

1.3.5. Biopsiad:

Külmkapis (+4ºС - +8ºС) mitte rohkem kui 1 päev,

Sügavkülmas (-20ºС) kuni 2 nädalat.

1.3.6. eesnäärme mahl: külmikus (+4ºС - +8ºС) mitte rohkem kui 1 päev.

1.3.7. sünoviaalvedelik: külmikus (+4ºС - +8ºС) mitte rohkem kui 1 päev.

2. Vere võtmise, säilitamise ja transportimise reeglid

immunokeemiliste uuringute jaoks

2.1.1. Vereproovide võtmise eelõhtul välistage füüsiline aktiivsus, stressirohke olukorrad, füsioterapeutilised protseduurid, ravimite võtmine (v.a. uimastiravi arsti poolt välja kirjutatud), suukaudsed rasestumisvastased vahendid, alkohol ja rasvased toidud. Ärge suitsetage vahetult enne uuringut.

2.1.2. Funktsiooni uurimisel kilpnääre kilpnäärmehormoone sisaldavate ravimitega ravi ajal viiakse uuring läbi 24 tundi pärast ravimi viimast annust; 2-3 päeva enne vere võtmist välistage joodi sisaldavate ravimite kasutamine.

2.1.3. PSA-d uurides nädal enne analüüsi, välistage kõik manipulatsioonid eesnäärmega.

2.1.4. Veri võetakse hommikul tühja kõhuga (et vältida tšilli, st seerumi hägusust) füsioloogilise puhkuse tingimustes. Enne vere võtmist tuleb patsiendile anda 15-minutiline puhkus.

2.1.5. Vereproovide võtmine toimub raviasutuse ravikabinetis, patsiendi asendis "istub" või "lamab" kubitaalveenist, järgides aseptika ja antisepsise reegleid. Veri kogutakse steriilsesse katsutisse, monosüstlasse või verevõtusüsteemi (Vacutainer®, Vacuette®).

2.1.6. Seerumi jaoks hapnikuvaba veri seista kuni täieliku piiramiseni. Pärast fibriini trombi moodustumist eraldatakse viimane seintest steriilse klaaspulgaga, iga proovi jaoks rangelt individuaalne, tuubi tsentrifuugitakse kiirusel 3000 p / min 15 minutit. * .

* Monosüstal ja verevõtusüsteemid (Vacutainer®, Vacuette®) tsentrifuugitakse ilma eelneva manipuleerimiseta.

2.1.7. Supernatant kollast värvi(seerum) pipeteeritakse ettevaatlikult tühja korgiga katsutisse (5 ml).

2.2. Vere ja vereseerumi säilitamise reeglid immunokeemiliste uuringute jaoks

2.2.1. Tovallikraav: külmikus (+40C - +80C) 1 päev.

2.2.2.Seerumveri:

Külmkapis temperatuuril + 40 ° C - + 80 ° C 4 päeva;

Sügavkülmas -200C juures 2 nädalat.

Lubatud on ainult üks sulatus!

TÄHELEPANU! Uuritakse seerumit, mis ei sisalda erütrotsüütide, bakterite kasvu, küloosi, hemolüüsi lisandeid. Nende nähtude esinemisel seerum hävitatakse ja määratakse korduv vereproov.

2.3. Vere võtmise ja säilitamise reeglid luupuse antikoagulandi uurimiseks

ja hüübimisuuringud

2.3.1. Veri võetakse hommikul tühja kõhuga kubitaalveenist, järgides uuringupäeval aseptika ja antisepsise reegleid. Vere hüübimise aktiveerimise vältimiseks ei tohi veeni kokkusurumine kesta kauem kui 1 minut .

2.3.2. Kui uuring on ette nähtud vere hüübimist mõjutavate ravimite võtmise taustal, tuleb see suunata.

2.3.3. Veri kogutakse spetsiaalsesse torusse, mis sisaldab naatriumtsitraat, märgini. Kui seda reeglit ei järgita, muutub vere/antikoagulandi suhe, mis võib negatiivselt mõjutada tulemuse täpsust.

2.3.4. 1 tunni jooksul pärast vere võtmist tuleb katseklaasi tsentrifuugida kiirusel 3000 p/min 15 minutit.

2.3.5. Plasma säilitamine: +40C - +80C juures kuni 6 tundi või -200C juures kuni 2 nädalat.

2.4. Vere võtmise ja säilitamise reeglid glükeeritud (glükosüülitud) hemoglobiini uurimiseks

2.4.1. Veri võetakse hommikul tühja kõhuga kubitaalveenist, järgides aseptika ja antisepsise reegleid.

2.4.2. Veri kogutakse spetsiaalsesse EDTA-d sisaldavasse katsutisse, segatakse õrnalt. Ärge tsentrifuugige!

2.4.3. Laborisse toimetamine vereproovi võtmise päeval.

2.4.4. Säilitamine: kuni 2 nädalat -200C juures.

2.5. Sünnituseelse sõeluuringu reeglid

2.5.1. Optimaalne ajastus uuringu läbiviimine: I trimester - 10-13 rasedusnädalat; II trimester - 16-18 rasedusnädalat.

2.5.2. Uuringule viidates täidetakse spetsiaalne suund, milles on vaja märkida raseda naise individuaalsed andmed: vanus (kuupäev / kuu / aasta), kaal, ultraheli tulemused (KTR, BDP, loodete arv, rasedusaeg ultraheli järgi (nädalad + päevad); olemasolul - andmed kaelavoldi suuruse kohta - NT) koos kohustusliku ultraheliuuringu kuupäeva ja ultraheli teostanud arsti nimega; täiendavad riskitegurid (suitsetamine, diabeet, IVF), etniline kuuluvus.

2.5.3. Raseduse teise trimestri sõeluuringuks saate kasutada esimesel trimestril tehtud ultraheliuuringu andmeid.

3. Biomaterjali võtmise, ladustamise ja transportimise reeglid

bakterioloogiliste uuringute jaoks

3.1. Biomaterjal võetakse enne antibiootikumiravi alustamist või mitte vähem kui nädal pärast selle lõppu.

3.2. Vältimaks proovi saastumist väliskeskkonnast mikroorganismidega, viiakse võetud biomaterjal standardsete steriilsuse reeglite kohaselt transpordisöötmega tühja anumasse või katseklaasi: katseklaasi (anuma) kork avatakse/ suletud, et korgi sisemus jääks steriilseks, steriilseid klaasnõusid ei hoita kaua lahti.

3.3. Biomaterjali võtmine tuvastamiseks mükoplasmad ja ureaplasmad, trihhomonaadid, gonokokid, mittespetsiifiline mikrofloora, anaeroobsete bakterite kultuurid toodetud kaubamärgiga katseklaasides süsiniku transpordikeskkonnaga:

Avage pakend näidatud kohas vastavalt skeemile;

Eemaldage ja avage katseklaas, visake kork ära;

Kasutage sondi, et võtta kraapimine/tampooniproov, biopsia või kasta sond bioloogilisse vedelikku;

Asetage sond koos biomaterjaliga kohe katseklaasi (sondi käepide on katseklaasi kork);

Nummerdage katseklaas, märkige number suunas.

3.4. Transpordisöe keskkonda viimiseks mõeldud bioloogilise materjali tüübid: määrdumised/kraapimised, eesnäärmemahl, tserebrospinaalvedelik, sünoviaalvedelik, biopsia.

3.5. Biomaterjali säilitamine katseklaasides koos transpordikeskkonnaga tuvastamiseks mükoplasmad ja ureaplasmad, mittespetsiifiline mikrofloora kuni transpordi hetkeni -

Tarne laborisse ühe päeva jooksul.

3.6. Biomaterjali säilitamine katseklaasides koos transpordikeskkonnaga tuvastamiseks Trihhomonaadid, gonokokid, anaeroobsete bakterite kultuurid kuni transpordi hetkeni - toatemperatuuril.

3.7. Looduslik biomaterjal: röga, eesnäärme mahl, sünoviaalvedelik 1–10 ml mittespetsiifilise mikrofloora tuvastamiseks kogutakse mükoplasmad ja ureaplasmad tühja steriilsesse anumasse.