animali da laboratorio. Animali da laboratorio, finalità e metodi del loro utilizzo in virologia Rivista di animali da laboratorio per la ricerca scientifica

ANIMALI DA LABORATORIO - diversi tipi animali appositamente allevati in laboratori o vivai a scopo sperimentale o pratica industriale. l. uso ai fini della diagnosi di malattie, modellazione di varie fiziol, e patol, condizioni, studio da stabilire - fattori professionali, farmaci, chimici e fisici, produzione di preparati biologici - sieri diagnostici, vaccini, colture tissutali, ecc.

Gli animali da laboratorio comprendono animali di vari gruppi sistematici: protozoi, vermi, artropodi, echinodermi, anfibi, uccelli e mammiferi. Tuttavia, molto spesso L. Zh. suddivisi in invertebrati e vertebrati.

Animali da laboratorio vertebrati

L'uso di animali vertebrati da parte dell'uomo per scopi cognitivi è iniziato, a quanto pare, durante lo sviluppo dell'allevamento del bestiame. Successivamente, gli animali iniziarono a studiarne la struttura e le funzioni vari corpi organismi viventi. In particolare sono note le osservazioni dell'antico naturalista greco Diogene (V secolo a.C.) che, aprendo i cadaveri degli animali, stabilì diverse funzioni degli atri. Successivamente, l'anatomia e la fisiologia degli animali furono studiate da Aristotele, K. Galen, W. Garvey e altri, inizialmente furono condotti esperimenti su animali domestici. Nel XV secolo divennero noti topi bianchi, ratti e porcellini d'India. Tuttavia, il concetto di "animali da laboratorio" si sviluppò alla fine del XIX secolo.

In totale in medico - biol, le ricerche utilizzano fino a 250 specie di animali. Alcune specie sono costantemente allevate in laboratori e vivai per ricerca scientifica(topi bianchi, ratti bianchi, porcellini d'India, conigli, criceti, gatti, cani, scimmie, maialini, ecc.). Altri vengono periodicamente catturati per esperimenti (arvicole, gerbilli, scoiattoli di terra, furetti, marmotte, armadilli, lemming, anfibi, pesci, ecc.). C'è un laboratorio di gruppo. uccelli (galline, piccioni, canarini, quaglie, ecc.). Parte del miele. gli esperimenti vengono eseguiti a pagina - x. animali (pecore, maiali, vitelli, ecc.). Da numero totale l. i topi rappresentano ca. 70%, ratti - 15%, cavie - 9%, uccelli - 3%, conigli - 2% e altri - 1%.

L'interesse dei ricercatori per i roditori è dovuto principalmente al fatto che molti di loro hanno dimensioni corporee ridotte, elevata fecondità e vita breve; in pochi mesi di vita di un roditore è possibile rintracciare i processi nel corpo che si svolgono da anni nell'uomo. L'aspettativa di vita media dei topi bianchi è di 1,5-2 anni, ratti 2-2,5 anni, criceti 2-5 anni, cavie 6-8 anni, conigli 4-9 anni.

Quando si alleva L.. effettuare controlli genetici, ecologici, caratteristiche morfologiche oltre che per motivi di salute.

Geneticamente L. suddiviso in non lineare (eterozigote) e lineare (omozigote). Gli animali non lineari vengono allevati sulla base di incroci casuali e, per questo motivo, lo hanno fatto un alto grado eterozigosi. Aumento della consanguineità (vedi) in questo gruppo L. Zh. non è consentito più dell'1% per generazione.

Nelle istituzioni scientifiche in cui vengono condotte ricerche su L., dovrebbero esserci divisioni scientifiche e ausiliarie: vivaio (vedi) e clinica sperimentale e biologica. Il vivaio contiene e parzialmente allevati alcuni tipi di animali con il loro successivo trasferimento per la ricerca sperimentale. La clinica biologica sperimentale contiene solo animali su cui si sta svolgendo la ricerca. I vivai e le cliniche biologiche sperimentali si trovano in un edificio separato (complesso di edifici). Per gli animali anfibi e i pesci utilizzati negli esperimenti, sono attrezzate stanze appropriate.

Per soddisfare la sempre crescente domanda di L. tipi diversi, linee e categorie, sorse un ramo indipendente dell'economia: l'allevamento di animali da laboratorio con adeguate basi scientifiche e industriali. È stata organizzata un'adeguata formazione dei lavoratori. == Animali da laboratorio invertebrati == Oltre agli animali vertebrati, nei laboratori vengono utilizzati anche molti invertebrati: protozoi, elminti, artropodi (insetti, acari), ecc. Scopi e metodi di utilizzo come L. g. molto vario. Oggetti indispensabili per una varietà di laboratorio. la ricerca è stata a lungo i protozoi (tipo protozoi). La velocità della loro riproduzione, le dimensioni ridotte, la semplicità comparativa e la facilità di manutenzione in laboratorio rendono i modelli sperimentali più semplici i più economici (vedi Protozoi).

Sono stati sviluppati metodi per il congelamento e la conservazione a lungo termine di alcuni tipi di protozoi (tripanosomi, leishmania, toxoplasma, ecc.) in azoto liquido. Questo metodo ti consente di creare criobanche di ceppi protozoici, il che è conveniente quando li usi come L..

La capacità di molti protozoi di riprodursi asessualmente è un prerequisito per ottenere linee pure di protozoi - cloni, che fungono da oggetto indispensabile per studi genetici, immunologici e di altro tipo.

Quando si organizzano esperimenti con i protozoi, si dovrebbe tener conto non solo della loro specie, ceppo o isolamento, ma spesso anche dell'appartenenza a una determinata linea genetica. Grande importanza al laboratorio. il contenuto ha conoscenza ciclo vitale sviluppo delle fasi più semplici e individuali di questo ciclo (vedi Ciclo di vita).

Quando si lavora con i protozoi, i fattori biotici e abiotici hanno un'influenza significativa ambiente.

Le grandi amebe (Amoeba proteus, Chaos, Pelomyxa, ecc.) Sono utilizzate negli studi citogenetici e di altro tipo, in particolare nell'analisi della variabilità ereditaria, dell'occorrenza e della frequenza delle mutazioni. In esperimenti di microchirurgia sono stati ottenuti ibridi citoplasmatici nucleari - eterocarioni, sui quali vengono studiati i fenomeni di incompatibilità del trapianto, variabilità epigenetica, ecc .. Su questi oggetti vengono effettuate varie osservazioni sugli effetti della ionizzazione e radiazioni ultraviolette, chim. mutagenesi.

I ciliati sono anche oggetti classici per gli studi citogenetici, inclusa l'analisi genetica nello studio di alcuni problemi di variabilità ed ereditarietà. I ciliati servono come oggetti convenienti per studi tossicologici, e anche allo studio di biol, effetto dell'azione raggi ultravioletti, radiazioni penetranti e altri fattori. Ciò tiene conto dei cambiamenti nella velocità e nella natura del movimento, nelle pulsazioni dei vacuoli contrattili, nell'apparato nucleare, nei disturbi della velocità di divisione, ecc. l'anno scorso alcuni tipi di ciliati hanno trovato ampia applicazione negli esperimenti di biologia molecolare, in particolare nell'ingegneria genetica. Per il mantenimento dei ciliati in vitro, è stata sviluppata una varietà di terreni in termini di composizione, dai più semplici sotto forma di infusi di erbe e foglie a complessi sintetici con una composizione chimica predeterminata. composizione.

Una condizione necessaria per l'uso di artropodi nell'esperimento è controllare la popolazione naturale originale (l'antenato della coltura di laboratorio) per la purezza della linea - l'assenza di infezione naturale da agenti patogeni, poiché gli artropodi succhiatori di sangue sono di importanza decisiva come portatori e custodi di agenti patogeni di molte infezioni trasmissibili (rickettsiosi, infezioni da arbovirus, leishmaniosi, filariosi, malaria, ecc.). Per determinare il grado di partecipazione di qualsiasi specie di artropodi alla trasmissione di agenti infettivi o il suo vero ruolo nell'epidemiologia e nell'epizootologia, è necessario condurre studi sperimentali con artropodi succhiatori di sangue e agenti patogeni.

Le zecche Argas (Argasidae) e Ixodidae (Ixodidae) sono utilizzate per la conservazione a lungo termine di agenti patogeni di spirochetosi, rickettsiosi, infezioni da arbovirus, ecc.

Zecche, zanzare, zanzare, mosche e altri artropodi vengono utilizzati in esperimenti per testare l'efficacia di insetticidi, acaricidi e repellenti, nonché per sviluppare biol, metodi per combattere i vettori di agenti patogeni umani e animali e parassiti agricoli.

Per lo studio sperimentale come portatori di agenti patogeni di malattie umane focali naturali (encefalite, febbri emorragiche, rickettsiosi, ecc.), nonché durante il test dell'efficacia degli acaricidi e lo sviluppo di metodi specifici di biol, controllo, zecche ixodid (genere Ixodes, Haemaphysalis, Hyalomma, Rhipicephalus, Dermacentor). Le zecche Ixodid sono facilmente coltivate in laboratorio. condizioni. Per creare un laboratorio. colture di zecche ixodid vengono raccolte da S.-x. animali (già ubriachi di sangue) o dalla vegetazione in habitat naturali (affamati). Gli acari sazi vengono posti in provette inumidite appositamente montate per l'ovodeposizione. Le zecche affamate vengono nutrite con L. sotto cappucci di stoffa, che vengono incollati sul dorso dell'animale ospite (maiali, conigli, topi, criceti, ma anche pecore e grandi bestiame). Con le dovute cure, gli acari della stessa linea vengono coltivati in laboratorio per anni.

Laboratorio conveniente. il modello sono gli acari argas (genere Ornithodoros, Alveonasus, Argas). Sono utilizzati per lo studio sperimentale della relazione delle zecche con agenti patogeni (spirochete, virus, rickettsia), nonché per la conservazione a lungo termine (a lungo termine) di agenti patogeni in uno stato attivo. Durante la coltivazione, gli acari argas vengono nutriti con la L. o con il sangue degli animali attraverso una membrana preparata dalla pelle di un topo o di un pollo. È stato sviluppato un metodo per nutrire gli acari argasidi su un embrione di pollo ripiantandoli nella camera d'aria dell'uovo. Le zecche Alveonasus lahorensis, Ornithodoros papillipes e altre vengono coltivate in laboratorio da molti decenni.

Come L. vengono utilizzati anche gli acari gamasid (Gamasoidea). Tra questi, gli acari Ornithonyssus bacoti (zecca di ratto), Dermanyssus gallinae (zecca di pollo), Allodermanyssus sanguineus (zecca di topo) sono particolarmente convenienti da tenere in laboratorio. Gli acari di Gamasovy usano per modellare inf. processo nella rickettsiosi, encefalite da zecche, tularemia, febbri emorragiche. In laboratorio organizzano il cosiddetto. la pianta è un nido artificiale, in cui vengono poste zecche e L.. (topi, polli, ecc.) per la loro alimentazione. Se necessario, le zecche vengono prelevate dalla pianta e conservate in apposite camere umidificate durante l'esperimento e l'osservazione.

Per il lavoro sperimentale in vari laboratori vengono allevate zanzare succhiasangue (Culicidae) di diversi generi (Aedes, Anopheles, Culex). In alcuni casi è conveniente utilizzare zanzare del genere Culex pipiens molestus, che sono facili da allevare in laboratorio; le femmine fecondate non entrano in diapausa in condizioni favorevoli e possono deporre le uova senza una precedente alimentazione di sangue. Le larve che emergono dalle uova si sviluppano in acque ricche di sostanza organica.

Delle zanzare del genere Aedes, è più facile allevare zanzare della specie Aedes aegypti, che sono portatrici di virus della febbre gialla e di altre malattie umane, così come del Plasmodium aviario, ecc. Possono essere tenute in gabbie relativamente piccole; le zanzare femmine si nutrono del sangue di conigli o altri animali. Le uova deposte dalle femmine di Aedes possono a lungo conservare all'asciutto; per rimuovere le larve, vengono poste in un recipiente con acqua. Il cibo per le larve è polvere di riso, polvere di dafnia, tuorlo d'uovo, ecc. L'acqua nel recipiente con le larve deve essere pulita e non contaminata dal cibo. I vasi in cui si sono formate le pupe vengono posti in gabbie di garza per l'allevamento delle zanzare.

Per un'ampia varietà di studi sperimentali, in particolare per lo studio della trasmissione di peste, rickettsiosi e altri agenti patogeni malattie batteriche persone e animali, studiando gli effetti di vari insetticidi, repellenti, ecc., utilizzano colture di pulci allevate in laboratorio (Aphaniptera). Le più convenienti per la coltivazione in laboratorio sono le pulci di ratto - Xenopsylla cheopis, Ceratophyllus fasciatus, ecc. In laboratorio vengono coltivate in piante speciali - barattoli di vetro, in cui vengono piantati gli animali ospiti; come l. vengono anche usati i pidocchi - portatori di spirochete patogene e rickettsiae.

Per svilupparsi basi scientifiche allevamento e scelta ragionevole per uno studio specifico delle specie animali in URSS, Inghilterra, Stati Uniti, Francia, Germania, Giappone e altri paesi, sono organizzati centri scientifici per la biologia comparativa di L.. In URSS, un tale centro è il Laboratorio di ricerca sui modelli biologici sperimentali dell'Accademia delle scienze mediche dell'URSS. Il coordinamento del lavoro in questo settore è svolto dal Comitato internazionale per gli animali da laboratorio (PC L A), più di 40 paesi, inclusa l'URSS, collaborano con la Crimea. Ogni anno si tengono conferenze scientifiche varie questioni biologia l. e biol, modellazione. Più di 30 periodici sono pubblicati all'estero su questi temi. Sono stati organizzati centri internazionali e regionali: International Reference Centre for Animals with Spontaneous Development of Tumors (Paesi Bassi, Amsterdam, Cancer Institute), FAO/WHO International Reference Centre for Animal Mycoplasmas (Danimarca, Aarhus, medical f-t un-ta) . Centro di riferimento regionale per i virus delle scimmie (USA, Texas, Dipartimento di microbiologia e malattie infettive). Sono disponibili centri di riferimento per l'ICLA: per l'istocompatibilità nei topi (PNR), nei ratti (Germania e USA), nei porcellini d'India (USA), nei cani (Germania), nei virus dei roditori (Cecoslovacchia, Inghilterra, Germania, Giappone), nei topi senza pelo (Danimarca) , sui patogeni aviari della malaria (Canada), ecc.

Nelle pubblicazioni dei risultati degli studi ottenuti su L., su raccomandazione dell'OMS, è necessario indicarne tipo, linea, età, sesso, fonte di acquisizione, condizioni di detenzione e alimentazione.

Da materiali aggiuntivi

armadilli(Supplemento all'articolo omonimo, pubblicato nel 12° volume) - mammiferi della famiglia Dasypodidae Bonaparte, 1838 dall'ordine degli edentuli - Edentata.

Ci sono 9 generi (21 specie) nella famiglia degli armadilli. Gli armadilli (sin. armadilli) sono i mammiferi viventi più antichi, comuni nell'America meridionale e centrale, negli Stati Uniti meridionali. Sono notturni e vivono nelle tane. Il nome "armadilli" è associato alla presenza sulla superficie dorsale del corpo di una conchiglia, costituita da singole placche ossee ricoperte da uno strato corneo (il cosiddetto scheletro cutaneo, non presente in altri mammiferi). La lunghezza del corpo di armadilli di varie specie varia da 12 a 100 cm, peso fino a 55 kg.

Gli armadilli sono usati in medicina e biologia come animali da laboratorio, in particolare l'armadillo a nove bande Dasypus novemcinctus Linnaeus, 1758 (Fig. 1). La lunghezza del corpo di un armadillo adulto a nove bande è di 40-55 cm, il peso è di 3-7 kg; il guscio è costituito dagli scudi toracici e pelvici, separati da 9 cinture mobili. Le caratteristiche della biologia degli armadilli a nove bande includono bassa temperatura corpo (32-35°), un lungo ritardo nell'impianto di blastocisti - fino a 4,5 mesi. (durata totale della gravidanza circa 9 mesi), riproduzione di quattro cuccioli monozigoti, capacità di tollerare una lunga assenza di ossigeno esogeno, reazioni ridotte immunità cellulare con pronunciate reazioni immunitarie umorali; aspettativa di vita - fino a 15 anni.

Negli armadilli del genere Dasypus, diversi embrioni si sviluppano da un uovo fecondato (vero poliembrione), il che li rende un modello naturale unico per studiare i meccanismi dell'aspetto dei gemelli, nonché molti problemi di ereditarietà e variabilità. I gemelli monozigoti Armadillo sono oggetto di ricerca sui trapianti, nonché di studi immunologici, tossicologici e teratolici. ricerca. Farmacocinetica medicinali nel corpo degli armadilli è molto vicino a quello degli umani. Ad esempio, è stato scoperto che la talidomide causa malformazioni fetali negli armadilli, che non sono state osservate in altri laboratori. animali.

Gli armadilli si adattano facilmente alla cattività. È meglio tenerli in piccoli recinti (2-4 m2) con una cuccia nido e una sabbiera. Come materiale da lettiera vengono solitamente utilizzati ritagli di carta o muschio. In natura si nutrono principalmente di insetti, vermi, i cibi vegetali costituiscono meno del 10% della dieta. Nel vivaio, la loro dieta include Carne tritata, uova, latte, verdura, frutta. Gli armadilli non sono aggressivi, quindi la cura e il lavoro sperimentale con loro non sono difficili. In cattività, gli armadilli a nove bande non si riproducono (alcune altre specie, ad esempio gli armadilli ispidi, si riproducono).

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VA Dushkin; D. H. Zasukhin, L. M. Gordeeva; AA Yushchenko.

Nel lavoro diagnostico dei laboratori batteriologici, si deve spesso ricorrere all'infezione dei cosiddetti animali da laboratorio o da esperimento. Molto spesso, nella pratica quotidiana, a questo scopo vengono utilizzati animali piccoli ed economici: topi e ratti bianchi, porcellini d'India, conigli, piccioni e galline. Cani e gatti sono usati meno frequentemente e vari tipi di animali da fattoria sono usati ancora più raramente. Lo scopo dei metodi di ricerca biologica è determinare la patogenicità o il grado di virulenza del materiale di prova, isolare colture pure di microbi dal materiale, separare i microrganismi patogeni da una miscela con specie saprofite, ecc. Anche gli animali da laboratorio sono ampiamente utilizzati nella pratica sierologica : cavie - per ottenere complemento , conigli (pecore, vitelli) - nella produzione di vari sieri agglutinanti, emolisina, eritrociti, ecc. Per la produzione di speciali mezzi nutritivi, si ottengono sangue, siero, vari organi, tessuti, ecc. dagli animali Inoltre, gli animali da laboratorio sono ampiamente utilizzati per determinare le qualità dei farmaci biologici e chemioterapici, nonché il lavoro scientifico e sperimentale. Gli animali da laboratorio servono anche per diagnosticare alcune malattie infettive, simulare processi infettivi sperimentali acuti e cronici, stabilire la virulenza e la tossigenicità dei ceppi microbici in esame, determinare l'attività dei vaccini preparati ed esaminarli per verificarne l'innocuità.

I laboratori batteriologici per il lavoro quotidiano di solito allevano animali da laboratorio in vivai appositamente organizzati per questo scopo. Ciò consente di ottenere sempre una quantità sufficiente di materiale sperimentale di qualità comprovata e impeccabile. Se gli animali non vengono allevati, ma tenuti solo in laboratorio, la stanza per loro si chiama vivarium. Nuovi lotti di animali vengono acquistati dai vivai. Le condizioni di conservazione e alimentazione in queste unità sono pressoché le stesse, pertanto, nel materiale sottostante non ci sarà differenziazione tra le strutture indicate del laboratorio.

Brevi informazioni sul mantenimento, l'allevamento, l'alimentazione e le malattie degli animali da laboratorio

Il contenuto degli animali nei vivai dovrebbe, per quanto possibile, corrispondere alle condizioni della loro esistenza in natura. Questa disposizione si applica in particolare agli animali selvatici e agli uccelli nati allo stato selvatico (colombi selvatici, passeri, uccelli domestici topi grigi e ratti). In condizioni sfavorevoli per l'allevamento e l'alimentazione, questi animali muoiono rapidamente in cattività (soprattutto passeri e topi grigi). Un prerequisito per il buon funzionamento del vivaio è la stretta osservanza di tutte le norme veterinarie, sanitarie, zootecniche e zooigieniche. Questi ultimi prevedono la custodia degli animali in gabbie spaziose, luminose, asciutte e pulite, in locali ben ventilati con temperatura normale, alimentazione razionale e completa e misure preventive per prevenire varie malattie. Di grande importanza per il vivaio è una buona composizione di produttori (maschi e femmine).

La nursery (vivarium) dovrebbe avere diversi scomparti per tenere vari tipi di animali (conigli, porcellini d'India, topi, ecc.). La struttura del vivaio comprende:

reparto per la quarantena e l'adattamento degli animali appena arrivati;

clinica biologica sperimentale per tenere gli animali nell'esperimento;

isolatori per animali sospettati di malattie infettive e animali ovviamente malati, la cui distruzione è indesiderabile nelle condizioni dell'esperimento;

sala sperimentale (o sala di manipolazione), in cui vengono eseguite pesatura, termometria, infezione, vaccinazione degli animali, prelievo di sangue e alcune altre procedure.

L'attrezzatura della sala sperimentale è determinata in ogni caso specifico dai compiti e dalle condizioni della ricerca scientifica svolta.

Il reparto di quarantena, il reparto sperimentale e la stanza di isolamento per gli animali infetti sono ubicati in locali rigorosamente isolati tra loro e da tutti gli altri locali del vivaio.

Oltre alle principali unità strutturali sopra elencate, il vivaio dovrebbe includere:

a) una mensa costituita da due locali attigui per la lavorazione e la lavorazione dei mangimi con accesso indipendente al corridoio da ciascun locale, una dispensa con casse appositamente attrezzate (in metallo o rivestite internamente di stagno) e frigoriferi per la conservazione delle scorte di mangime,

b) reparto di disinfezione e lavaggio di 2 locali, uniti da un'autoclave di transizione o da una camera a caldo secco.

Il lavoro del reparto di disinfezione e lavaggio è determinato dallo stato del materiale in ingresso alla lavorazione. Il materiale infetto, come gabbie, lettiere, mangiatoie, viene prima disinfettato e poi sottoposto a pulizia meccanica e lavaggio. Il materiale che non presenta un rischio di infezione viene prima sottoposto a pulizia meccanica e quindi (se necessario) sterilizzato.

La lavanderia in un vivaio adeguatamente organizzato ha uno scivolo per la spazzatura per rimuovere i liquami e un carrello elevatore per consegnare materiale e attrezzature al vivaio.

Accanto al reparto di disinfezione e lavaggio c'è un magazzino di inventario pulito (di riserva) con gabbie, abbeveratoi, mangiatoie, ecc., locali di servizio e un'unità sanitaria (docce e servizi igienici) per il personale.

In conformità con le norme sanitarie vigenti, il vivaio si trova in un edificio separato o all'ultimo piano dell'edificio del laboratorio. Quando si posiziona un vivaio in un edificio laboratorio, deve essere completamente isolato da tutte le altre stanze.

La stanza per l'allevamento degli animali da laboratorio deve essere calda, luminosa e asciutta con riscaldamento centralizzato, illuminazione naturale e artificiale, alimentazione forzata e ventilazione di scarico, fornitura di acqua calda e fredda.

I pavimenti del vivaio sono realizzati in materiale impermeabile, senza battiscopa, inclinati verso aperture o grondaie collegate alla fognatura. Le pareti sono rivestite con piastrelle smaltate, i soffitti e le porte sono dipinti con colori ad olio.

GOST 33216-2014

Gruppo T58

STANDARD INTERSTATALE

LINEE GUIDA PER LA TENUTA E LA CURA DEGLI ANIMALI DA LABORATORIO

Linee guida per la sistemazione e la cura degli animali. Disposizioni specifiche per specie per roditori e conigli da laboratorio

MKS 13.020.01

Data di introduzione 2016-07-01

Prefazione

Gli obiettivi, i principi di base e la procedura di base per lo svolgimento dei lavori sulla standardizzazione interstatale sono stabiliti in GOST 1.0-92 "Sistema di standardizzazione interstatale. Disposizioni di base" e GOST 1.2-2009 "Sistema di standardizzazione interstatale. Standard interstatali, regole, raccomandazioni per la standardizzazione interstatale. Norme per lo sviluppo, l'adozione, l'applicazione, l'aggiornamento e la cancellazione"

A proposito della norma

1 SVILUPPATO dal partenariato non commerciale "Associazione di specialisti nel lavoro con animali da laboratorio" (Rus-LASA)

2 INTRODOTTO dal Comitato Tecnico di Normazione TC 339 "Sicurezza delle Materie Prime, dei Materiali e delle Sostanze"

3 ADOTTATO dal Consiglio interstatale per la standardizzazione, la metrologia e la certificazione (verbale del 22 dicembre 2014 N 73-P)


Nome breve del paese MK (ISO 3166) 004-97		Nome abbreviato dell'organismo nazionale di normalizzazione
Azerbaigian		Azstandard
Bielorussia		Standard statale della Repubblica di Bielorussia
Kazakistan		Stendardo statale della Repubblica del Kazakistan
Kirghizistan		Kirghizistanart
Moldavia		Moldavia-Standard
Russia		Rosstandart

4 Con ordinanza dell'Agenzia federale per la regolamentazione tecnica e la metrologia del 9 novembre 2015 N 1733-st, lo standard interstatale GOST 33216-2014 è entrato in vigore come standard nazionale della Federazione Russa dal 1 luglio 2016.

5 Questa norma è conforme al documento internazionale Convenzione europea per la protezione degli animali vertebrati utilizzati a fini sperimentali e ad altri scopi scientifici (STE N 123)* (Convenzione europea per la protezione degli animali vertebrati utilizzati a fini sperimentali e altri scopi scientifici (STE N 123) ).
________________
* L'accesso ai documenti internazionali e stranieri menzionati di seguito nel testo può essere ottenuto facendo clic sul collegamento al sito http://shop.cntd.ru. - Nota del produttore del database.

Traduzione dall'inglese (en).

Grado di conformità - non equivalente (NEQ)

6 PRESENTATO PER LA PRIMA VOLTA

Le informazioni sulle modifiche a questo standard sono pubblicate nell'indice informativo annuale "Standard nazionali" e il testo delle modifiche e degli emendamenti - nell'indice informativo mensile "Standard nazionali". In caso di revisione (sostituzione) o cancellazione della presente norma, verrà pubblicato un avviso corrispondente nell'indice informativo mensile "Norme nazionali". Vengono inoltre inserite informazioni, notifiche e testi pertinenti sistema informativo uso pubblico - sul sito ufficiale agenzia federale sulla regolamentazione tecnica e la metrologia su Internet

introduzione

Gli Stati membri del Consiglio d'Europa hanno deciso che il loro obiettivo è la protezione degli animali utilizzati a fini sperimentali e altri scopi scientifici, che è una garanzia che il possibile dolore, sofferenza, angoscia o lesioni con conseguenze a lungo termine sulla salute derivanti dalle procedure, sarà ridotto al minimo.

Il risultato è stata la firma e la ratifica da parte della maggioranza degli Stati membri del Consiglio d'Europa (tutti gli Stati dell'UE, oltre a Macedonia, Norvegia, Serbia, Regno Unito di Gran Bretagna e Irlanda del Nord, Svizzera) della Convenzione per la protezione di animali vertebrati utilizzati per scopi sperimentali o per altri scopi scientifici ETS N 123 , Strasburgo, 18 marzo 1986 (di seguito Convenzione).

La Convenzione si applica a tutte le attività relative all'uso di animali da laboratorio: sistemazione e cura degli stessi, conduzione di esperimenti, abbattimento umanitario (eutanasia), rilascio di permessi per l'uso di animali nelle procedure, controllo su allevatori, fornitori e utilizzatori, istruzione e formazione personale, statistiche. La convenzione ha due allegati tecnici contenenti orientamenti sulla cura e il mantenimento degli animali da laboratorio (allegato A) e tabelle per la presentazione di informazioni statistiche sul numero di animali utilizzati a fini scientifici (allegato B).

Almeno una volta ogni cinque anni, la Convenzione è soggetta a revisione nel corso di consultazioni multilaterali delle parti, tenute da un gruppo di lavoro, al fine di analizzare la conformità delle sue disposizioni al mutare delle circostanze e ai nuovi dati scientifici. Di conseguenza, viene presa la decisione di rivedere disposizioni separate Convenzione o estensione della loro validità.

Nel corso delle consultazioni, le parti coinvolgono Stati non membri del Consiglio d'Europa, nonché interagiscono con organizzazioni non governative che rappresentano gli interessi di una serie di specialisti: ricercatori, veterinari, allevatori di animali da laboratorio, associazioni per la protezione dei diritti degli animali, specialisti nel campo delle scienze animali, rappresentanti dell'industria farmaceutica e altri che partecipano alle riunioni dei gruppi di lavoro in qualità di osservatori.

Nel 1998, i firmatari della Convenzione hanno deciso di rivedere l'Allegato A. Il Gruppo di Lavoro ha completato la revisione dell'Allegato A nella sua 8a riunione (22-24 settembre 2004) e l'ha sottoposta per approvazione alla Consultazione Multilaterale delle Parti. Il 15 giugno 2006, la 4a Consultazione multilaterale delle Parti sulla Convenzione europea per la protezione degli animali vertebrati utilizzati a fini sperimentali e ad altri fini scientifici ha adottato un allegato A riveduto della Convenzione. Il presente allegato stabilisce i requisiti per la custodia e la cura degli animali sulla base delle conoscenze attuali e buona pratica. Chiarisce e completa le principali disposizioni dell'articolo n. 5 della Convenzione. Lo scopo di questo allegato è di assistere le autorità pubbliche, le istituzioni ei singoli individui nei loro sforzi per raggiungere gli obiettivi del Consiglio d'Europa in questo senso.

Il capitolo "Generale" è una guida per l'alloggiamento, la manutenzione e la cura di tutti gli animali utilizzati per scopi sperimentali e altri scopi scientifici. Ulteriori indicazioni sui tipi più comunemente usati sono fornite nelle sezioni pertinenti. In mancanza di informazioni in tale sezione, devono essere osservate le prescrizioni fornite nella parte generale.

Le sezioni specifiche per specie si basano su raccomandazioni di gruppi di esperti per roditori, conigli, cani, gatti, furetti, primati non umani, animali da allevamento, maialini, uccelli, anfibi, rettili e pesci. I gruppi di esperti hanno fornito ulteriori informazioni scientifiche e pratiche, sulla base delle quali sono state formulate raccomandazioni.

L'Appendice A include consigli sulla progettazione di alloggi per animali (vivarium), nonché raccomandazioni e linee guida per conformarsi ai requisiti della Convenzione. Tuttavia, gli standard consigliati per le camere sono i minimi accettabili. In alcuni casi, potrebbe essere necessario aumentarli, poiché le esigenze individuali per il microambiente possono differire in modo significativo a seconda del tipo di animale, della sua età, condizione fisica, densità, scopo di tenere gli animali, ad esempio, per l'allevamento o gli esperimenti, nonché la durata della loro detenzione.

L'allegato A rivisto è entrato in vigore 12 mesi dopo la sua adozione, il 15 giugno 2007.

Questa norma è stata sviluppata tenendo conto delle disposizioni normative della Convenzione europea per la protezione degli animali vertebrati utilizzati negli esperimenti e per altri scopi scientifici (STE N 123), in particolare l'allegato A e l'articolo N 5 della Convenzione.

La serie GOST "Linee guida per il mantenimento e la cura degli animali da laboratorio" è stata sviluppata sulla base e include tutte le disposizioni dell'Appendice A alla Convenzione per la protezione degli animali vertebrati utilizzati negli esperimenti e per altri scopi scientifici, e quindi questi standard sono armonizzati con i requisiti europei in questo settore.

1 area di utilizzo

Questa norma internazionale specifica Requisiti generali al posizionamento, al mantenimento e alla cura di roditori e conigli da laboratorio utilizzati per scopi educativi, sperimentali e altri scopi scientifici.

2 Riferimenti normativi

Questo standard utilizza il riferimento normativo al seguente standard:

GOST 33215-2014 Linee guida per la manutenzione e la cura degli animali da laboratorio. Norme per l'equipaggiamento dei locali e procedure organizzative

Nota - Quando si utilizza questo standard, è consigliabile verificare la validità degli standard di riferimento nel sistema informativo pubblico - sul sito Web ufficiale dell'Agenzia federale per la regolamentazione tecnica e la metrologia su Internet o secondo l'indice informativo annuale "Standard nazionali" , che è stato pubblicato dal 1 gennaio dell'anno in corso, e sui numeri dell'indice informativo mensile "Standard nazionali" per l'anno in corso. Se lo standard di riferimento viene sostituito (modificato), quando si utilizza questo standard, dovresti essere guidato dallo standard sostitutivo (modificato). Se la norma di riferimento viene cancellata senza sostituzione, la disposizione in cui è dato il riferimento ad essa si applica nella misura in cui tale riferimento non è influenzato.

3 Termini e definizioni

Questo standard utilizza termini con le definizioni corrispondenti - secondo GOST 33215-2014.

4 Requisiti specifici per specie per l'allevamento di roditori

4.1 Introduzione

4.1.1 Topi

Il topo da laboratorio è stato allevato dal topo domestico selvatico (Mus musculus), un animale scavatore e arrampicatore che è prevalentemente notturno e costruisce nidi per regolare le condizioni microambientali, il riparo e la riproduzione. I topi sono ottimi arrampicatori, ma sono riluttanti ad attraversare spazi aperti e preferiscono stare vicino a rifugi - muri o altri oggetti. Il tipo di organizzazione sociale delle comunità di topi varia ed è determinato principalmente dalla densità della popolazione. I maschi riproduttivi attivi mostrano un comportamento territoriale pronunciato; le femmine in gravidanza e in allattamento possono mostrare aggressività quando proteggono i nidi. Poiché i topi, in particolare gli albini, hanno una vista scarsa, si affidano principalmente all'olfatto e lasciano segni di urina sull'habitat. Anche i topi sono molto udito acuto sono sensibili agli ultrasuoni. Ci sono differenze significative nel comportamento dei topi di diversi ceppi.

4.1.2 Ratti

Il ratto da laboratorio è stato allevato dal ratto grigio (Rattus norvegicus). I ratti sono animali sociali, evitano gli spazi aperti e usano segni di urina per marcare il territorio. Il loro senso dell'olfatto e dell'udito sono molto sviluppati, mentre i ratti sono particolarmente sensibili agli ultrasuoni; la visione diurna è scarsa, ma in alcune linee pigmentate la visione è piuttosto nitida in condizioni di scarsa illuminazione. I ratti albini evitano livelli di luce superiori a 25 lux (lx). I ratti sono più attivi di notte. Gli animali giovani sono molto curiosi e spesso hanno giochi sociali.

4.1.3 Gerbilli

Il gerbillo mongolo o di mezzogiorno (Meriones sp.) è un animale sociale prevalentemente notturno, ma in condizioni di laboratorio rimane attivo alla luce del giorno. IN natura selvaggia i gerbilli scavano con ingressi a tunnel per proteggersi dai predatori e quindi spesso esibiscono tane stereotipate in ambienti di laboratorio a meno che non siano fornite le condizioni per scavare.

4.1.4 Criceti

L'antenato selvatico del criceto da laboratorio è Mesocricetus sp. - un animale che conduce uno stile di vita prevalentemente solitario. I criceti femmine sono più grandi e più aggressivi dei maschi e possono ferire gravemente il loro partner. I criceti spesso organizzano un posto separato nella gabbia per la toilette e segnano il territorio con i segreti delle ghiandole situate ai lati del corpo. Le femmine di criceto mangiano spesso i piccoli per ridurre il numero della prole.

4.1.5 Cavie

Le cavie selvatiche (Cavia porcellus) sono roditori sociali, che si muovono attivamente che non scavano mai buche, ma si insediano in rifugi o usano le tane di altre persone. I maschi adulti possono essere aggressivi l'uno verso l'altro, ma in generale si osserva raramente aggressività. I porcellini d'India tendono a congelarsi quando sentono un suono inaspettato. Possono correre via come un gruppo in preda al panico in risposta a un movimento improvviso e inaspettato. I porcellini d'India sono particolarmente sensibili allo spostamento da un luogo all'altro e possono congelarsi per trenta minuti o più dopo.

4.2 Controllo dell'habitat

4.2.1 Ventilazione - secondo GOST 33215-2014, clausola 4.1.

4.2.2 Temperatura

I roditori devono essere tenuti a temperature comprese tra 20°C e 24°C. Nella stabulazione in gruppo, la temperatura nelle gabbie con fondo solido è spesso superiore alla temperatura ambiente e, anche con una ventilazione ben funzionante, può superarla di 6 ° C. I materiali da costruzione e le case dei nidi consentono agli animali di controllare autonomamente il microclima. Particolare attenzione dovrebbe essere prestata al mantenimento della temperatura nei sistemi di barriera e dove sono tenuti gli animali nudi.

4.2.3 Umidità

L'umidità relativa negli alloggi dei roditori deve essere mantenuta tra il 45% e il 65%. L'eccezione sono i gerbilli, che dovrebbero essere mantenuti al 35-55% di umidità relativa.

4.2.4 Illuminazione

L'illuminazione della cella dovrebbe essere bassa. I rack delle gabbie dovrebbero avere un ripiano superiore oscurato per ridurre il rischio di degenerazione retinica negli animali, in particolare gli albini, tenuti in gabbie di livello superiore. Per osservare gli animali al buio durante il loro fase attiva, puoi usare la luce rossa invisibile ai roditori.

4.2.5 Rumore

Poiché i roditori sono molto sensibili agli ultrasuoni e li usano per comunicare, gli estranei dovrebbero essere ridotti al minimo. segnali sonori in questa fascia. Ultrasuoni (oltre 20 kHz) emessi attrezzatura da laboratorio, inclusi rubinetti gocciolanti, ruote di carri e monitor di computer, possono causare comportamenti anomali e disturbi riproduttivi negli animali. Si raccomanda di misurare periodicamente il livello di rumore nei locali per mantenere gli animali in un'ampia gamma di frequenze e per lungo tempo.

4.2.6 Requisiti per i sistemi di allarme - in conformità con GOST 33215-2014, clausola 4.6.

4.3 Le condizioni e i fattori che influenzano la salute degli animali sono riportati in GOST 33215-2014, clausole 6.1 e 6.4.

4.4.1 Posizionamento

Gli animali sociali dovrebbero essere tenuti in gruppi costanti e armoniosi, anche se in alcuni casi, ad esempio, quando si tengono insieme topi maschi adulti, criceti o gerbilli, la tenuta in gruppo è problematica a causa dell'aggressività intraspecifica.

Se c'è il rischio di aggressione o lesioni, gli animali possono essere tenuti individualmente. La violazione di gruppi stabili e armoniosi dovrebbe essere evitata, poiché ciò può causare stress molto grave negli animali.

4.4.2 Arricchimento dell'habitat

Le gabbie ei materiali utilizzati per arricchire l'ambiente dovrebbero consentire agli animali di esibire un comportamento normale e ridurre la probabilità di situazioni di conflitto.

La lettiera e i materiali per la nidificazione, così come i rifugi, sono componenti importanti dell'habitat utilizzato per la riproduzione, il mantenimento delle colonie o la sperimentazione. Devono essere sempre presenti nella gabbia, a meno che ciò non sia contrario a considerazioni veterinarie o sia dannoso per il benessere degli animali. Se è necessario rimuovere tali materiali dalle gabbie, ciò dovrebbe essere coordinato con il personale addetto alla cura degli animali e una persona competente con autorità consultiva per il benessere degli animali.

Il materiale per la costruzione del nido deve consentire agli animali di costruire un nido completamente chiuso. In assenza di tale opportunità, le case di nidificazione dovrebbero essere fornite agli animali. Il materiale della lettiera dovrebbe assorbire l'urina ed essere utilizzato dagli animali per lasciare segni di urina. I materiali per la nidificazione sono essenziali per topi, ratti, criceti e gerbilli in quanto consentono loro di creare un microambiente adatto al riposo e alla riproduzione. Le cassette nido e altri nascondigli sono importanti per porcellini d'India, criceti e topi.

Ai porcellini d'India dovrebbero sempre essere forniti materiali come il fieno da masticare e nascondersi.

I bastoncini di legno per rosicchiare e masticare possono essere utilizzati come arricchimento dell'habitat per tutti i roditori da laboratorio.

I rappresentanti della maggior parte delle specie di roditori cercano di dividere la gabbia in diverse zone: per il consumo e la conservazione del cibo, il riposo e la minzione. Tale separazione può essere basata su un segno olfattivo piuttosto che su una barriera fisica, ma le barriere parziali possono comunque essere utili in quanto consentono agli animali di iniziare o evitare il contatto con i loro compagni di gabbia. Per complicare l'ambiente, si consiglia vivamente di utilizzare oggetti aggiuntivi. Tubi, scatole e rastrelliere da arrampicata sono esempi di progetti che sono stati utilizzati con successo per i roditori. Inoltre, consentono di aumentare l'area utile della gabbia.

I gerbilli hanno bisogno di più spazio rispetto ad altre specie di roditori. L'area della gabbia dovrebbe consentire loro di costruire e/o utilizzare tane di dimensioni adeguate. I gerbilli hanno bisogno di uno spesso strato di lettiera per scavare, costruire nidi e scavare, che dovrebbe essere lungo fino a 20 cm.

Dovrebbe essere preso in considerazione l'uso di celle traslucide o leggermente colorate, a condizione che buona recensione osservare gli animali senza disturbarli.

Gli stessi principi riguardanti la qualità e la quantità di spazio, materiali di arricchimento e altri requisiti stabiliti nel presente documento dovrebbero applicarsi ai sistemi di barriera, come i sistemi di gabbie ventilate individualmente (IVC), sebbene le loro caratteristiche di progettazione possano richiedere modifiche nell'implementazione di quanto sopra principi.

4.4.3 Chiusure: dimensioni e struttura del solaio

Le gabbie devono essere realizzate con materiali facili da pulire e progettate per consentire l'osservazione senza disturbare gli animali.

Una volta che i giovani animali diventano attivi, richiedono in proporzione più spazio rispetto agli adulti.

4.4.3.1 Dimensioni

In questa e nelle successive tabelle che presentano le linee guida per l'allevamento dei roditori, "altezza della gabbia" indica la distanza tra il pavimento e la parte superiore della gabbia, con oltre il 50% dell'area minima della gabbia richiesta per avere questa altezza prima che i materiali vi siano collocati per creare condizioni ricche di stimoli (arricchimento ambientale).

La pianificazione del trattamento dovrebbe tenere conto del potenziale di crescita degli animali al fine di fornire loro uno spazio vitale sufficiente (come dettagliato nelle tabelle 1-5) per la durata dello studio.

4.4.3.2 Struttura del solaio

Pavimento solido con materiale da lettiera o pavimento forato, preferibilmente pavimenti a griglia o grigliati. Nel caso di utilizzo di gabbie con pavimento a griglia oa rete di animali, è necessario, se ciò non contraddice le condizioni dell'esperimento, fornire aree di pavimento solide o con lettiera per il riposo. Per le cavie, le barre possono essere un'alternativa. È consentito non utilizzare materiale da lettiera durante l'accoppiamento degli animali.

I pavimenti in rete possono causare gravi lesioni, quindi devono essere controllati attentamente per parti allentate e sporgenze taglienti e rimossi in modo tempestivo.

femmine su date successive durante la gravidanza, durante il parto e l'allattamento, devono essere tenuti esclusivamente in gabbie con fondo solido e materiale da lettiera.

Tabella 1 - Topi: dimensioni minime celle (recinzioni)


	min. dimensioni, cm	Superficie/animale, cm	min. Altezza (cm
Nella colonia e durante gli esperimenti



Allevamento
	Per coppie monogame (animali consanguinei o consanguinei) o triadi (consanguinei). Per ogni ulteriore le femmine con figliata dovrebbero essere aggiunti 180 cm
Nella colonia degli allevatori* Superficie della gabbia 950 cm
Superficie della gabbia 1500 cm
* Per un breve periodo dopo lo svezzamento, i topi possono essere alloggiati in gruppi a maggiore densità, a condizione che siano collocati in gabbie ampie con un ambiente sufficientemente arricchito, purché non vi siano segni di deterioramento del loro benessere, ad esempio: aumento dell'aggressività, aumento della morbilità e mortalità e il verificarsi di stereotipie e altri disturbi nel comportamento normale, perdita di peso o altre risposte fisiologiche o comportamentali causate dallo stress.

Tabella 2 - Ratti: dimensioni minime delle gabbie (recinti)


	min. dimensioni, cm	Superficie/animale, cm	min. Altezza (cm
In colonia e durante gli esperimenti*




Allevamento
	Femmina con cucciolata; per ogni ulteriore ratto adulto dovrebbe essere aggiunto 400 cm
Nella colonia degli allevatori** Gabbia - 1500 cm



Nella colonia degli allevatori** Gabbia - 2500 cm


* Negli studi a lungo termine, gli animali dovrebbero essere dotati di gabbie di dimensioni adeguate per consentire loro di essere tenuti in gruppi sociali. Poiché in tali studi è difficile prevedere la densità della colonia al termine dell'esperimento, è accettabile mantenere gli animali in condizioni con un'area per animale inferiore a quella sopra indicata. In tal caso, la priorità dovrebbe essere data alla permanenza del gruppo. ** Per un breve periodo dopo lo svezzamento, i cuccioli di ratto possono essere alloggiati in gruppi a densità maggiore purché siano collocati in gabbie ampie con un ambiente sufficientemente arricchito, purché non vi siano segni di deterioramento del loro benessere, come aumento dell'aggressività, aumento morbilità e mortalità e il verificarsi di stereotipie e altri disturbi del comportamento normale, perdita di peso o altre reazioni fisiologiche o comportamentali causate dallo stress.

Tabella 3 - Gerbilli: dimensioni minime delle gabbie (recinti)


	min. dimensioni, cm	Superficie/animale, cm	min. Altezza (cm
Nella colonia (in magazzino) e durante gli esperimenti

Allevamento
	Per coppie monogame o triadi con cucciolata

Tabella 4 - Criceti: dimensioni minime delle gabbie (recinti)


	min. dimensioni, cm	Superficie/animale, cm	min. Altezza (cm
Nella colonia e durante gli esperimenti


Allevamento
	Femmine o coppie monogame con cucciolata
Nella colonia degli allevatori*
* Per un breve periodo dopo lo svezzamento, i criceti possono essere alloggiati in gruppi a maggiore densità, a condizione che siano collocati in gabbie ampie con un ambiente sufficientemente arricchito, purché non vi siano segni di deterioramento del loro benessere, ad esempio: aumento dell'aggressività, aumento della morbilità e mortalità e il verificarsi di stereotipie e altri disturbi nel comportamento normale, perdita di peso o altre risposte fisiologiche o comportamentali causate dallo stress.

Tabella 5 - Cavie: dimensioni minime delle gabbie (recinti)


	min. dimensioni, cm	Superficie/animale, cm	min. Altezza (cm
Nella colonia e durante gli esperimenti




Allevamento
	Coppie con figliata; per ogni ulteriore alle femmine vanno aggiunti 1000 cm

4.4.4 Alimentazione - secondo GOST 33215-2014, clausola 6.6.

4.4.5 Irrigazione - in conformità con GOST 33215-2014, clausola 6.7.

4.4.6 Biancheria da letto, nidificazione e materiale assorbente - secondo GOST 33215-2014, clausola 6.8.

4.4.7 Pulizia della cella

Nonostante la necessità di mantenere elevati standard igienici, può essere opportuno lasciare tracce di profumo sugli animali. Va evitata una pulizia troppo frequente delle gabbie, soprattutto quando si tengono femmine gravide e femmine con prole, poiché il disturbo causato può indurre la femmina a mangiare la prole o disturbare il suo comportamento materno.

La decisione sulla frequenza della pulizia della gabbia dovrebbe essere presa tenendo conto del tipo di gabbia utilizzata, della specie animale, della densità della colonia, della capacità di sistemi di ventilazione mantenere la qualità dell'aria interna desiderata.

4.4.8 Manipolazione degli animali

Dovresti sforzarti di causare il minimo disturbo agli animali e non violare le condizioni del loro mantenimento, che è particolarmente importante per i criceti.

4.4.9 Eutanasia - secondo GOST 33215-2014, clausola 6.11.

4.4.10 Conservazione dei registri - in conformità con GOST 33215-2014, clausola 6.12.

4.4.11 Identificazione - secondo GOST 33215-2014, clausola 6.13.

5 Requisiti specifici per specie per l'allevamento di conigli

5.1 Introduzione

IN condizioni naturali i conigli (Oryctolagus cuniculi) vivono in colonie. Quando sono tenuti in cattività, devono essere dotati di spazio sufficiente con un ambiente arricchito, la cui mancanza può portare alla perdita della normale attività motoria e al verificarsi di anomalie scheletriche.

5.2 Controllo dell'habitat

5.2.1 Ventilazione - secondo GOST 33215-2014, clausola 4.1.

5.2.2 Temperatura

I conigli devono essere tenuti tra 15°C e 21°C. La temperatura nei recinti a fondo pieno in cui è tenuto un gruppo di conigli è molto spesso superiore alla temperatura ambiente e, anche con un sistema di ventilazione ben funzionante, può superarla di 6 ° C.

Il materiale del nido e/o le capanne consentono agli animali di controllare il proprio microclima. Particolare attenzione dovrebbe essere prestata alle letture della temperatura nei sistemi di barriera.

5.2.3 Umidità

L'umidità relativa dell'aria nei locali per l'allevamento dei conigli non deve essere inferiore al 45%.

5.4.1 Posizionamento

I giovani conigli e le femmine dovrebbero essere tenuti in gruppi armoniosi. L'isolamento è accettabile se è per il benessere degli animali o per motivi veterinari. La decisione di consentire la detenzione di animali in isolamento a fini sperimentali dovrebbe essere presa in consultazione con il personale addetto alla cura degli animali e una persona responsabile con autorità consultiva sulle condizioni fisiche e mentali degli animali. I maschi adulti non castrati possono mostrare aggressività territoriale e non dovrebbero essere tenuti insieme ad altri maschi non castrati. Per l'allevamento in gruppo di femmine giovani e adulte, i recinti all'aperto con un ricco habitat si sono dimostrati eccellenti. Tuttavia, dovresti tenere d'occhio il gruppo per prevenire possibili aggressioni. I compagni di cucciolata sono ideali per l'allevamento in gruppo, vivono insieme dal momento in cui vengono svezzati dalla madre. Nei casi in cui l'allevamento in gruppo non è possibile, gli animali dovrebbero essere il più vicino possibile l'uno all'altro, in vista.

5.4.2 Arricchimento dell'habitat

I materiali idonei per arricchire l'habitat dei conigli sono foraggi grossolani, blocchi di fieno o bastoncini da masticare e strutture di ricovero.

I recinti a pavimento per alloggi di gruppo dovrebbero prevedere il posizionamento di barriere di separazione e strutture di riparo che consentano agli animali di osservare da lì. Quando si allevano conigli, è necessario fornire materiale per la nidificazione e box per la maternità.

5.4.3 Chiusure: dimensioni e struttura del solaio

La preferenza dovrebbe essere data alle gabbie rettangolari, che dovrebbero avere una superficie rialzata non superiore al 40% della superficie totale del pavimento. Lo scaffale dovrebbe consentire agli animali di sedersi e sdraiarsi, nonché di muoversi liberamente sotto di esso. Anche se l'altezza della gabbia dovrebbe consentire al coniglio di sedersi senza che le punte delle orecchie sollevate tocchino il soffitto, lo stesso requisito non si applica a una piattaforma rialzata. Se esiste una ragione scientifica o veterinaria sufficiente per non posizionare un tale ripiano nella gabbia, l'area della gabbia dovrebbe essere più grande del 33% per un coniglio e del 60% per due conigli. Ove possibile, i conigli dovrebbero essere tenuti in recinti.

5.4.3.1 Dimensioni

Tabella 6 - Conigli di età superiore a 10 settimane: dimensioni minime del recinto


	min. area per 1-2 animali socialmente idonei, cm	min. Altezza (cm

I dati della Tabella 6 si applicano sia alle gabbie che alle voliere. Le gabbie devono avere una piattaforma rialzata (vedi Tabella 9). I recinti dovrebbero essere dotati di barriere di separazione per consentire agli animali di iniziare contatti sociali oppure evitali. Per ciascuno dal 3° al 6° coniglio posto nella voliera, vanno aggiunti 3000 cm2 all'area della voliera, e per ogni successivo - 2500 cm3.

Tabella 7 - Coniglio femmina con cuccioli: dimensioni minime dei recinti


Peso femminile, kg	min. dimensioni, cm	Spazio aggiuntivo per nidi, cm	min. Altezza (cm

Almeno 3-4 giorni prima del parto, la femmina dovrebbe essere dotata di un box separato o box da parto in cui possa costruire un nido. È meglio se la scatola di maternità è posizionata fuori dal luogo in cui la femmina è tenuta permanentemente. Dovrebbero essere forniti anche paglia o altro materiale per la nidificazione. Le recinzioni per i conigli da riproduzione dovrebbero essere organizzate in modo tale che la femmina possa allontanarsi dai suoi conigli adulti, che sono in grado di lasciare il nido, in un compartimento separato, un riparo o una piattaforma sopraelevata. Dopo lo svezzamento, i conigli della stessa cucciolata dovrebbero essere tenuti insieme il più a lungo possibile nello stesso recinto in cui sono nati.

Nel recinto di allevamento sono ammessi fino a otto cuccioli fino a quando non hanno sette settimane. Cinque cuccioli di 8-10 settimane di età possono essere tenuti nell'area minima consentita del recinto.

Tabella 8 - Conigli di età inferiore a 10 settimane: dimensioni minime del recinto


Età, settimane	min. dimensione della cella, cm	min. area/animale, cm	min. Altezza (cm

I dati della Tabella 8 si applicano sia alle gabbie che alle voliere. I recinti dovrebbero essere dotati di barriere di separazione per consentire agli animali di iniziare o evitare il contatto sociale. Dopo lo svezzamento, i compagni di cucciolata dovrebbero essere tenuti insieme il più a lungo possibile nello stesso recinto in cui sono nati.

Tabella 9 - Conigli di età superiore a 10 settimane: dimensioni ottimali piattaforma sopraelevata in recinzioni aventi le dimensioni indicate in tabella 6.


Età, settimane	Dimensione ottimale del sito, sms	L'altezza ottimale della piattaforma dal pavimento della gabbia, cm

Per garantire il corretto utilizzo della pedana sopraelevata e della recinzione in genere, nella tabella 9 sono riportate le dimensioni e l'altezza ottimali alla quale si trova la pedana. È consentita una deviazione fino al 10% nella direzione di diminuzione o aumento delle dimensioni specificate. Se ci sono buone ragioni scientifiche o veterinarie per non collocare un tale ripiano nel recinto, allora l'area del recinto dovrebbe essere più grande del 33% per un coniglio e del 60% per due conigli per fornire loro spazio per il normale locomotore attività e la capacità di evitare il contatto con l'individuo dominante.

Per i conigli di età non superiore alle 10 settimane, le dimensioni ottimali della piattaforma rialzata sono di 55 cm25 cm e la sua altezza dal livello del pavimento dovrebbe consentire agli animali di utilizzare sia la piattaforma che lo spazio sottostante.

5.4.3.2 Fondo gabbia

Le barriere con pavimenti grigliati non devono essere utilizzate a meno che non sia previsto uno spazio sufficiente affinché tutti gli animali possano riposare contemporaneamente. I pavimenti solidi con biancheria da letto o pavimenti perforati sono migliori dei pavimenti a griglia o grigliati.
MKS 13.020.01

Parole chiave: animali da laboratorio, roditori, conigli

Testo elettronico del documento
preparato da Kodeks JSC e verificato rispetto a:
pubblicazione ufficiale
M.: Standartinform, 2016

ANIMALI DA LABORATORIO

animali da laboratorio, animali appositamente allevati per uso medico, veterinario e ricerca biologica. al tradizionale l. includono topi bianchi, ratti bianchi, vari tipi di criceti, porcellini d'India, conigli, gatti, cani; ratti di cotone, arvicole, gerbilli, furetti, opossum, armadilli, scimmie, maialini, asini, marsupiali, pesci, anfibi e altri C'è un gruppo di uccelli da laboratorio (galline, piccioni, quaglie, ecc.). Tranne l., negli esperimenti vengono utilizzati animali domestici, più spesso pecore e maiali. I produttori di sieri immuni e diagnostici sono cavalli, asini, pecore e conigli. Nell'esperimento vengono utilizzati anche molti invertebrati (ad esempio Drosophila) e protozoi.

l. controllati da indicatori genetici, ecologici, morfologici e per motivi di salute. Sono allevati in vivai speciali o in vivai presso istituzioni scientifiche. Non lineare l. deve avere un alto grado di eterozigosi. Più piccola è la popolazione chiusa di animali non lineari allevati, maggiore è il grado di crescita della consanguineità tra di loro. Gli animali omozigoti (inbred, lineari) allevati sulla base di stretti consanguinei sono sempre più utilizzati per la ricerca (Fig. 1). Sono note circa 670 linee di topi, 162 linee di ratti, 16 linee di cavie, 66 linee di criceti, 4 linee di gerbilli e 7 linee di polli. Ogni linea ha le sue caratteristiche nel set di geni, sensibilità a vari antigeni e fattori di stress. Gli animali lineari sono sistematicamente monitorati per l'omozigosi. Quando si alleva l. ottenere 5 cucciolate all'anno da topi, in media 7 topi per ogni nidiata, rispettivamente nei ratti 5 e 7, nelle cavie 3 e 5, nei conigli 4 e 6. Locali per l.(i vivai) dovrebbero essere altamente igienici, spaziosi, con 10 ricambi d'aria all'ora e un'umidità dell'aria del 5065%. 65 topi adulti o 240 giovani, 20100 ratti, 3040 criceti, 1518 porcellini d'India, 34 conigli sono posti per 1 m 2 di area. È consentito tenere non più di 15 topi, 10 ratti, 5 criceti e porcellini d'India, 1 coniglio in una gabbia. Almeno il 50% dell'area del vivaio è destinato ai locali tecnici. Per evitare lo scambio di agenti infettivi, non è consentito il contenuto di specie diverse. l. nella stessa stanza o gabbia. Topi, ratti, porcellini d'India e criceti sono tenuti prevalentemente in vassoi di plastica a forma di cono con coperchi a rete; conigli, cani, scimmie e uccelli in gabbie metalliche. I vassoi e le gabbie vengono posizionati su rastrelliere in 16 livelli (Fig. 2), dotati di abbeveratoi automatici e alimentatori a tramoggia, accuratamente lavati e disinfettati con mezzi fisici o chimici prima dell'uso. I bagni di topi e ratti vengono sostituiti settimanalmente con quelli puliti. La rimozione della biancheria da letto e il lavaggio vengono effettuati in un apposito locale dotato di appositi dispositivi o lavatrici. alimentato l. mangimi naturali o concentrati bricchettati secondo gli standard sviluppati fabbisogno giornaliero. Il mangime bricchettato viene posto negli alimentatori per diversi giorni. Servi l. personale addestrato che ha subito una visita medica.

l. molti malattie infettive: salmonellosi, listeriosi, stafilococcosi, vaiolo, diarrea virale, coriomeningite linfocitaria, coccidiosi, elmintiasi, infezioni fungine, lesioni trasmesse da zecche, ecc. Si verifica un trasporto latente (soprattutto nei ratti) batteri patogeni e virus, forme nascoste di malattie infettive di eziologia poco studiata. Alcune infezioni l. sono zooantroponosi. Prevenzione delle malattie l. si basa sul rigoroso rispetto delle norme igienico-sanitarie, sulla massima disinfezione dell'ambiente (locali, aria, attrezzature, alimentazione, lettiera, ecc.). La produzione è organizzata in alcuni paesi l. senza fattori patogeni specifici, i cosiddetti animali SPF (vedi). Il crescente bisogno di l. diede origine alla scienza di l., che comprende genetica, ecologia, morfologia, fisiologia, patologia e altre sezioni, nonché allevamento speciale di animali da laboratorio. In molti paesi (USA, Gran Bretagna, Germania, Francia, URSS, ecc.) esistono centri scientifici corrispondenti, il cui coordinamento è svolto dal Comitato internazionale per la scienza della l.(YCLAS).

Letteratura:
Bashenina N.V., Linee guida per l'allevamento e l'allevamento di nuove specie di piccoli roditori nella pratica di laboratorio. M., 1975;
Regole sanitarie per la sistemazione, l'attrezzatura e la manutenzione di cliniche biologiche sperimentali (vivarium), M., 1973.

Veterinario Dizionario enciclopedico. - M.: "Enciclopedia Sovietica". Caporedattore V.P. Shishkov. 1981 .

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animali da laboratorio- animali utilizzati in esperimenti o esperimenti scientifici, test biologici, processi educativi, nonché nella produzione di prodotti biologici ... Fonte: LEGGE MODELLO SUL TRATTAMENTO DEGLI ANIMALI (Insieme a RAZZE POTENZIALMENTE PERICOLOSE ... ... Terminologia ufficiale

ANIMALI DA LABORATORIO- sono usati con scientifico. scopo in biologia, medicina, medicina veterinaria, p. x ve. A seconda dei compiti dello scientifico esperimento seleziona L., naib, adatto agli scopi indicati. Questo tiene conto non solo di biol. caratteristiche della vista che forniscono semplicità e ... ...

animali da laboratorio- animali sperimentali, o sperimentali, utilizzati nei laboratori per scopi scientifici e pratici. l. deve essere sano, prendine un po' caratteristiche specifiche(es. suscettibilità alle infezioni in esame,… … Grande enciclopedia sovietica

Modello animali- * Madeleine live * Animali da laboratorio modello animale che vengono utilizzati per la ricerca scientifica, in particolare medica, al fine di studiare le malattie ereditarie umane. Locanda. temp. nella medicina sperimentale se ne usano circa 250 ... ... Genetica. Dizionario enciclopedico

ANIMALI IN ESPERIMENTI- utilizzo di animali nella ricerca biologica, fisiologica e medica, nei test di tossicità vari prodotti e droghe, in vari programmi educativi e così via. Gli animali vengono macellati e poi esaminati ... ... Enciclopedia Collier

Laboratorio di animali- specie animali eterogenee (sperimentali) utilizzate nei laboratori per scopi scientifici e applicativi. Attualmente, nella medicina sperimentale vengono utilizzate circa 250 specie di vertebrati e invertebrati. Tradizionale per... Dizionario di microbiologia

ANIMALI- (Animalia), il regno degli organismi viventi, una delle più grandi divisioni del sistema organico. pace. Probabilmente ha avuto origine ca. 1 1,5 miliardi di anni fa nel mare sotto forma di cellule simili a microscopiche. flagellati di ameboidi aclorofilli. Terra F… Dizionario enciclopedico biologico

Animali nello spazio- Gli esperimenti che avrebbero dovuto determinare se il volo umano nello spazio fosse possibile iniziarono in URSS e negli Stati Uniti negli anni '40 e '50. La prima fase della ricerca biocosmica sono stati i ripetuti voli di cani, scimmie e altri animali su razzi a un'altitudine di ... Enciclopedia dei giornalisti

Libri

animali da laboratorio. Libro di testo , Stekolnikov Anatoly Aleksandrovich , Shcherbakov Grigory Gavrilovich , Yashin Anatoly Viktorovich , Il manuale contiene materiale su importanti rami della medicina veterinaria e della zootecnia, riguardanti il mantenimento, l'alimentazione e le malattie degli animali da laboratorio. È stabilito secondo la metodologia generalmente accettata, corrispondente a ... Categoria: Veterinaria Collana: Libri di testo per le università. Letteratura speciale Editore:

Pubblicazioni correlate:

https://doi.org/10.30895/1991-2919-2018-8-4-207-217.

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